ISSN 2412-4036 (print)
ISSN 2713-1823 (online)

The G319S variants of the HNF1A gene in a family with diabetes mellitus

Ivanoshchuk D.E., Mikhailova S.V., Ovsyannikova A.K., Shakhtshneider E.V., Druk I.V., Rymar O.D., Voevoda M.I.

1) Federal Research Center Institute of Cytology and Genetics of Siberian Branch of the Russian Academy of Sciences, Novosibirsk; 2) Research Institute of Therapy and Preventive Medicine – a branch of Federal Research Center Institute of Cytology and Genetics of Siberian Branch of the Russian Academy of Sciences, Novosibirsk; 3) Omsk State Medical University of the Ministry of Healthcare of Russia; 4) Federal Research Center for Fundamental and Translational Medicine, Novosibirsk
Abstract. In the process of differential diagnosis of the diabetes mellitus (DM) type, the greatest difficulty is presented by patients with the onset of the disease at a young age, since in this age group type 1 diabetes, type 2 diabetes and monogenic forms of diabetes (including MODY diabetes) could be manifesting.
The aim of the study is to show the possibilities of molecular genetic research for MODY-HNF1A and type 2 diabetes mellitus with early onset on the example of a clinical case of diabetes in a proband with a burdened family anamnesis.
Material and methods. The proband and the mother of the proband underwent targeted DNA sequencing using the Illumina MiSeq NGS System (Illumina Inc., San Diego, CA, USA). The target panel included the coding regions and adjacent splicing sites of MODY-associated genes: HNF4A, GCK, HNF1A, PDX1, HNF1B, NEUROD1, KLF11, CEL, PAX4, INS, BLK, KCNJ11, ABCC8, and APPL1.
Results. The previously described heterozygous variant rs137853240 was found, which is located at the 3 ‘end of exon 4 of the HNF1A gene, near the highly conserved splice donor site and leads to a change in the set of transcripts encoded by this gene. Previously, it was shown that this substitution is associated with early onset of type 2 diabetes mellitus in an isolated population of the indigenous communities of Canada (the Oji-Kree population). Therefore, we estimated its prevalence in samples of the Koryaks, Chukchi, and Eskimos of Canada. Additionally, we analyzed population samples of the population of Western Siberia and patients with type 2 diabetes. In all studied samples, carriers of c.955G> A, p.Gly319Ser (rs137853240) were not found. Taking into account the described phenotypic features of individuals carrying the Gly319Ser variant, we assume that this variant is associated with the development of MODY.
Conclusion. The presented clinical case demonstrates the possibilities of molecular genetic study of monogenic forms of diabetes mellitus, in particular, associated with HNF1A gene analysis. A personalized approach to diagnosis and treatment is especially important in identifying a nonclassical course of diabetes in young people.

Keywords

human genetics
MODY-diabetes
type 2 diabetes mellitus
populations
new generation sequencing
HNF1A gene
rs137853240

ВВЕДЕНИЕ

Сахарный диабет (СД) – группа метаболических (обменных) заболеваний, характеризующихся хронической гипергликемией, которая является результатом нарушения секреции инсулина, действия инсулина или обоих этих факторов [1]. СД 1-го и 2-го типа наиболее распространены среди всех форм СД в мире и относятся к мультифакториальным заболеваниям, причиной развития которых является совокупность наследственных и средовых факторов. Редкие формы диабета, развивающиеся вследствие дефекта в одном гене, составляют менее 5% случаев от всех форм СД [2]. Менделевские подтипы этих форм СД включают диабет взрослого типа у молодых, или MODY (Maturity-Onset Diabetes of the Young), неонатальный диабет, а также синдромальные формы. Трудность их диагностики состоит в том, что многие из этих подтипов имеют клинические признаки, сходные с СД 1-го и 2-го типа [3]. Пациентам с моногенными формами СД требуется персонализированный подход к подбору оптимальной терапии [4].

Верифицировать у пациента моногенную форму СД можно только при проведении молекулярно-генетического исследования. В случае его отсутствия до 80% случаев моногенного диабета неверно диагностируются или остаются нераспознанными [5]. Самой известной и хорошо изученной формой моногенного диабета является MODY. Эта гетерогенная группа заболеваний с аутосомно-доминантным типом наследования обусловлена структурными нарушениями в генах, приводящими к дисфункции бета-клеток поджелудочной железы. В настоящее время известно 14 типов MODY, которые классифицируются по мутациям генов, определяющих клинический фенотип: HNF4A, GCK, HNF1A, PDX1, HNF1B, NEUROD1, KLF11, CEL, PAX4, INS, BLK, KCNJ11, ABCC8 и APPL1 [6]. 70% случаев MODY ассоциированы с мутациями в генах GCK и HNF1A [7].

У пациентов с MODY, обусловленным носительством мутаций в гене GCK, умеренная гликемия натощак проявляется уже с рождения, обычно протекает бессимптомно и чаще всего не требует назначения сахароснижаюшей терапии. Пациенты с MODY-GCK могут корректировать уровень гликемии диетой и умеренными физическими нагрузками [8].

Гипергликемия при MODY-HNF1A диагностируется в возрасте от 21 до 26 лет, семейный анамнез у носителей, как правило, отягощен по СД и сердечно-сосудистым заболеваниям в нескольких поколениях. Натощак у таких пациентов наблюдается нормогликемия, но при выполнении орального глюкозотолерантного теста фиксируется прирост гликемии. Также для MODY-HNF1A характерна глюкозурия. Заболевание при этом носит прогрессирующий характер с высоким риском развития макрососудистых осложнений. При лечении у пациентов сохраняется высокая чувствительность к препаратам сульфонилмочевины [9]. Ген HNF1A расположен на длинном плече 12-й хромосомы (12q24.31) и состоит из 10 экзонов (https://www.uniprot.org). Белок, кодируемый этим геном, состоит из 631 аминокислотного остатка, его структура консервативна у позвоночных животных (при сравнении человека и крысы идентичность аминокислотного состава составляет 97%) [10]. В своей структуре белок HNF1A содержит N-концевой димерезационный домен (первые 32 аминокислоты), ДНК-связываюший высококонсервативный домен (91–279 аминокислот), внутри которого находится неконсервативный участок (со 182 по 200 аминокислоту), разделяющий специфический POUS гомеодомен (91–181 аминокислоты) и POUH-гомеодомен (203–279 аминокислоты), и С-концевой трансактивационный домен (282–631 аминокислот) [11, 12]. Альтернативный сплайсинг обеспечивает образование трех изоформ белка, которые различаются аминокислотным составом и уровнями экспрессии [13]. Исследования на мышиных моделях показали, что гетерозиготные нокауты по гену HNF1A имеют нормальный фенотип, тогда как у человека наличие гетерозиготного варианта приводит к развитию СД [14, 15]. Основной транскрипт кодируется на участке с 1-го по 10-й экзон и экспрессируется в период эмбрионального развития в поджелудочной железе, а в зрелом возрасте в тканях почек и печени. Более короткие изоформы, кодируемые экзонами 1–7 и 1–6, выявлены преимущественно в зрелых тканях поджелудочной железы [16]. Известно более 500 различных вариантов в гене HNF1A, которые приводят к развитию СД. Описаны как однонуклеотидные замены в различных его частях, так и структурные перестройки гена HNF1A (http://www.hgmd.cf.ac.uk/ac/search.php). Показана высокая степень пенетрантности у носителей гетерозиготных мутаций гена HNF1A; к 25 годам развитие диабета наблюдается у 63%, к 35 годам – у 78 %, а к 55 годам – у 95,5% из них [17]. Диагноз СД 2-го типа с ранним началом нередко является ошибочным у носителей мутаций в этом гене, так как раннее начало диабета (25–45 лет), наличие семейной истории и отсутствие ожирения не относятся к специфическим критериям и не позволяют проводить дифференциальный диагноз [18].

Целью данной работы было показать возможности молекулярно-генетического исследования для MODY-HNF1A и СД 2-го типа с ранним началом на примере клинического случая диабета у пробанда с отягощенным семейным анамнезом.

МАТЕРИАЛ И МЕТОДЫ

Протокол исследования был одобрен этическим комитетом НИИ терапии и профилактической медицины – филиала Института цитологии и генетики Сибирского отделения РАН (№ 7 от 22.06.2008). Письменное информированное согласие на обследование и участие в исследовании было получено от каждого пациента.

Выполнен забор образцов венозной крови у пробанда и ее матери для молекулярно-генетического исследования. Геномную ДНК выделяли из лейкоцитов венозной крови методом фенол-хлороформной экстракции [19].

Проведено таргетное высокопроизводительное секвенирование. В таргетную панель были включены кодирующие участки и прилегающие сайты сплайсинга MODY-ассоциированных генов, в том числе гена HNF1a. Для приготовления библиотек использовали набор KAPA HyperPlus Kit (Roche, Швейцария). Качество анализируемой ДНК и подготовленных библиотек оценивали с помощью системы капиллярного электрофореза Agilent 2100 Bioanalyzer (Agilent Technologies Inc., США). Анализ полностью подготовленной библиотеки проводился на платформе Illumina MiSeq (Illumina, США). Полученные данные выравнивали на референсный геном человека (GRCh37) с использованием программного обеспечения Burrow–Wheeler Alignment tool (BWA v.0.7.17) (http://bio-bwa.sourceforge.net). Последующий биоинформационный анализ включал удаление ПЦР-дубликатов, поиск однонуклео­тидных вариантов с помощью Genome Analysis Toolkit v.3.3 (https://gatk.broadinstitute.org/hc/en-us) и их аннотацию с использованием программы ANNOVAR (https://annovar.openbioinformatics.org/en/latest). Также были использованы данные баз gnomAD (https://gnomad.broadinstitute.org), ClinVar (https://www.ncbi.nlm.nih.gov/clinvar), HGMD (база данных мутаций генов человека, http://www.hgmd.cf.ac.uk/ac/index.php) и учтены литературные данные. Селекцию редких и новых вариантов проводили в MODY-ассоциированных генах (HNF4A, GCK, HNF1A, PDX1, HNF1B, NEUROD1, KLF11, CEL, PAX4, INS, BLK, KCNJ11, ABCC8 и APPL1). Ранее нами было опубликовано подробное описание проведения биоинформационного анализа [20].

Обнаруженная замена rs137853240 у пробанда и ее матери была подтверждена секвенированием по Сэнгеру фрагмента ДНК, содержащего экзон 4 гена HNF1a с использованием прямого и обратного праймеров: 5’-GTCACACAGCAGACCTGGCA-3’, 5’-GGCATGAATGGAATGGAACC-3’. Дизайн олигонуклеотидов для исследованного варианта был выполнен в программе Primer-Blast (https://www.ncbi.nlm.nih.gov/tools/primer-blast). Секвенирующая реакция была выполнена на приборе ABI 3500 (Thermo Fisher Scientific, США) с помощью набора BigDye Terminator v3.1 Cycle Sequencing Kit (Thermo Fisher Scientific, США). Последовательности были проанализированы в программе Vector NTI® Advance (Thermo Fisher Scientific, США). Версия hg19 человеческого генома служила референсной последовательностью для выравнивания.

На втором этапе исследования выполнен анализ распространенности аллелей и генотипов rs137853240 в выборках из популяции европеоидного населения Западной Сибири (376 человек, средний возраст 55,9±6,8 лет, доля мужчин 45,2%) и этнических групп, включающих чукчей (224 человека), коряков (56 человек) и эскимосов Канады (20 человек), а также в клинической группе пациентов с СД 2-го типа (169 человек, средний возраст 59,0±6,7 лет, доля мужчин 45%, уровень глюкозы больше 11,1 ммоль/л), обследованных в рамках проекта HAPIEE (Новосибирск) [21] с использованием технологии TaqMan. Амплификацию геномной ДНК, которая содержала изучаемый вариант, проводили методом полимеразной цепной реакции в режиме реального времени (ПЦР-РВ) на приборе StepOnePlus Real-Time PCR System (Thermo Fisher Scientific, США). Подбор фланкирующих олигонуклеотидов и TaqMan-зондов осуществляли с помощью программы Vector NTI Advance 11.0 (Thermo Fisher Scientific, США). Были подобраны следующие фланкирующие олигонуклеотиды и комплементарные зонды, меченные красителями FAM, HEX и гасители флуоресценции BHQ1и BHQ2 соответственно: rs137853240-F-5’-CTGCCCGCTCACAGCTC- 3’, rs137853240-R-5’-CTGCCCGCTCACAGCTC-3’, rs137853240-5’-[FAM] TCCCCCAGTAAGGTCCACGGTAAGT [BHQ1]-3’, rs137853240-5’-[HEX] TCCCCCA­GTAAGGTCCACAGTAAGT [BHQ2]-3’. Реакцию ПЦР-РВ проводили в объеме 25 мкл с использованием 15 нг ДНК, по 100 нМ прямого и обратного фланкирующих праймеров, 50 нМ каждого из двух зондов и мастер микса БиоМастер HS-qPCR Hi-ROX (2×) (Биолабмикс, Россия) согласно протоколу производителя. Режим амплификации начинался со 120 с при 60 °C, затем 36 циклов: 95 °C – 30 с, 66 °C – 30 с, 72 °C – 30 с. Завершалась программа амплификации при 600 °C в течение 120 с.

РЕЗУЛЬТАТЫ

Клинический фенотип MODY был выявлен у пробанда и ее матери при обследовании у эндокринолога [22]. Пациентка 26 лет обратилась к эндокринологу, в возрасте 15 лет у нее было диагностировано нарушение толерантности к глюкозе. В 16 лет появились жалобы на общую слабость, уровень глюкозы плазмы натощак составлял 9,1 ммоль/л, антитела к глутаматдекарбоксилазе были отрицательными, выявлена глюкозурия (до 3 г/л в утренней порции мочи), НbА1с – 8,0%. У пациентки определяется отягощенный наследственный анамнез по гипергликемии.

У матери пробанда был диагностирован СД 2-го типа в возрасте 39 лет (в настоящий момент ее возраст 53 года, индекс массы тела 38,3 кг/м2). Принимает пероральную сахароснижающую терапию (метформин, гликлазид и эмпаглифлозин). Определяется диабетическая дистальная полинейропатия, ожирение 2-й степени, артериальная гипертензия, неалкогольная жировая болезнь печени.

У бабушки пробанда по линии матери СД был впервые выявлен в возрасте 58 лет, для лечения применялся метформин. У дедушки по линии отца в возрасте 60 лет был диагностирован сахарный диабет 2-го типа, но у отца пробанда на момент обследования наблюдалась нормогликемия (рис., фра­гмент А). При молекулярно-генетическом исследовании у пробанда и ее матери была выявлена гетерозиготная миссенс-замена c.955G>A, p.Gly319Ser (rs137853240) экзона 4 гена HNF1А (рис., фра­гмент Б). Выявленный вариант описан в базе данных ClinVar, упоминается в базе данных gnomAD и описан в литературе [23] в популяции Оджи-кри. Эта этническая группа является изолированной популяцией канадских эскимосов в заповеднике Сэнди-Лейк в Северном Онтарио [24], поэтому в дальнейший анализ популяционной распространенности редкого аллеля мы включили этнические группы коряков, чукчей и эскимосов Канады.

152-1.jpg (37 KB)

При оценке распространенности вариантов по rs137853240 мы не обнаружили носителей c.955G>A, p.Gly319Ser (rs137853240) в выборках из популяции европеоидного населения Западной Сибири и этнических групп чукчей, коряков и эскимосов Канады, а также в клинической группе пациентов с СД 2-го типа.

Полученные нами результаты и данные предыдущих исследований позволяют предположить, что вариант c.955G>A, p.Gly319Ser (rs137853240) экзона 4 гена HNF1А служит причиной развития MODY-HNF1A у пробанда и ее матери.

ОБСУЖДЕНИЕ

Представленный случай демонстрирует особенности течения СД, который связан с мутацией в гене HNF1A, кодирующим ядерный фактор гепатоцитов-1. Как известно, у пациентов молодого возраста с нарушением углеводного обмена может быть верифицирован СД 1-го типа, СД 2-го типа или более редкие моногенные формы диабета. Такие характеристики исследованного пациента, как начало СД в молодом возрасте, сохраненная функция бета-клеток при стаже заболевания более 10 лет (уровень С-пептида находился в пределах референсных значений и составлял 469 н/мл), отсутствие ожирения, выявление дислипидемии в молодом возрасте (триглицериды – 3,1 ммоль/л, общий холестерин – 7 ммоль/л), а также отягощенный наследственный анамнез по гипергликемии, позволили предположить наличие MODY-HNF1A. Молекулярно-генетическое исследование выявило мутацию Gly319Ser в гене HNF1A у двух членов семьи с СД. Ядерный фактор гепатоцитов-1 гомео­бокс А принадлежит к группе транскрипицонных факторов, которые играют важную роль в формировании и дифференцировке различных органов и тканей (печень, почки, поджелудочная железа) посредством регуляции экспрессии тканеспецифических генов в период эмбрионального развития и в течение жизни [25].

Обнаруженный нами вариант c.955G>A, p.Gly319Ser был впервые выявлен у коренного населения Канады с СД 2-го типа, в популяции Оджи-Кри [23] и не был найден ни у одной другой исследованной ранее этнической группы [23]. Также он не был обнаружен нами в популяционной выборке г. Новосибирска, в выборке пациентов с СД, в популяционных выборках коряков, чукчей и канадских эскимосов. Носительство варианта Gly319Ser в популяции Оджи-Кри коррелировало с предрасположенностью к СД 2-го типа: оно наблюдалось у 40% пациентов с этой формой заболевания [23]. В популяции Оджи-кри на фоне увеличения потребления пищевых жиров и снижения физической активности произошло многократное увеличение частоты случаев развития СД 2-го типа. В ходе поиска генетического фактора, предрасполагающего к заболеванию, идентифицирован вариант Gly319Ser гена HNF1A. Частота аллеля Ser319 составляла 0,190 (21/110) у лиц с диабетом и 0,063 (22/350) у лиц без диабета [26]. Высокая частота варианта в популяции может быть обусловлена эффектом основателя – локальным повышением частоты редкого аллеля в результате сегрегации ограниченной группы индивидуумов. Среди лиц с диагнозом СД 2-го типа носители Gly319Ser, по сравнению с остальными пациентам, демонстрировали фенотип, соответствующий дефекту секреции инсулина с более ранним началом, меньшей массой тела более низким уровнем инсулина [23].

Описанная мутация расположена в трансактивационном домене белка HNF1A, высококонсервативного донорного сайта сплайсинга в аминокислотной позиции 391 и входит во все 3 описанные ранее изоформы белка. Но, судя по всему, патогенный эффект этой мутации связан не с изменением структуры белка, а с изменением набора кодируемых этим геном мРНК. Определяющая ее rs137853240 находится в 3 нуклеотиде от 3’ границы экзона 4 этого гена. Функциональные исследования на клеточных линиях показали, что rs137853240 приводит к образованию двух аномальных укороченных транскриптов и существенному снижению количества полноразмерного транскрипта гена HNF1A. Существует гипотеза, что такой дисбаланс может приводить к снижению общих уровней транскрипции и быть причиной возникновения СД [27]. Принимая во внимание описанные фенотипические особенности лиц-носителей варианта Gly319Ser, мы предполагаем, что этот вариант ассоциирован с развитием MODY.

В настоящем исследовании продемонстрирован пример успешной диагностики СД с нетипичным течением – MODY-HNF1A – путем объединения клинических критериев и метода высокотехнологического секвенирования ДНК. Методы секвенирования нового поколения позволяют более эффективно и экономически выгодно диагностировать типы MODY [28]. Применение метода высокотехнологичного секвенирования также перспективно при оценке возможных причин развития фенотипа MODY в случае отсутствия причинных мутаций в традиционных MODY-ассоциированных генах для обнаружения потенциально патогенных мутаций в других генах.

ЗАКЛЮЧЕНИЕ

Представленный случай показывает перспективность молекулярно-генетического исследования пациентов с семейными формами СД, в частности, связанного с анализом гена HNF1A. Персонализированный подход к диагностике и лечению особенно важен при выявлении неклассического течения СД у лиц молодого возраста.

References

  1. Дедов И.И., Шестакова М.В., Майоров А.Ю. с соавт. Алгоритмы специализированной медицинской помощи больным сахарным диабетом. Под ред. И.И. Дедова, М.В. Шестаковой, А.Ю. Майорова. 9-й выпуск. Сахарный диабет. 2019; S1–1: 1–144. [Dedov I.I., Shestakova M.V., Mayorov A.Yu. et al. Standards of specialized diabetes care. Edited by Dedov I.I., Shestakova M.V., Mayorov A.Yu. 9th edition. Sakharnyy diabet = Diabetes. 2019; S1–1: 1–144 (In Russ.)]. https://dx.doi.org/10.14341/DM221S1.
  2. Yang Y., Chan L. Monogenic diabetes: What it teaches us on the common forms of type 1 and type 2 diabetes. Endocr Rev. 2016; 37(3): 190–222. doi: 10.1210/er.2015-1116.
  3. Lachance C.H. Practical aspects of monogenic diabetes: A clinical point of view. Can J Diabetes. 2016; 40(5): 368–75. doi: 10.1016/j.jcjd.2015.11.004.
  4. Mohan V., Radha V. Precision diabetes is slowly becoming a reality. Med Princ Pract. 2019; 28(1): 1–9. doi: 10.1159/000497241.
  5. Shields B.M., Hicks S., Shepherd M.H. et al. Maturity-onset diabetes of the young (MODY): How many cases are we missing? Diabetologia. 2010; 53(12): 2504–08. doi: 10.1007/s00125-010-1799-4.
  6. Firdous P., Nissar K., Ali S. et al. Genetic testing of maturity-onset diabetes of the young current status and future perspectives. Front Endocrinol (Lausanne). 2018; 9: 253. doi: 10.3389/fendo.2018.00253.
  7. Ellard S., Bellanne-Chantelot C., Hattersley A.T. European Molecular Genetics Quality Network (EMQN) MODY group. Best practice guidelines for the molecular genetic diagnosis of maturity-onset diabetes of the young. Diabetologia. 2008; 51(4): 546–53. doi: 10.1007/s00125-008-0942-y.
  8. Stride A., Shields B., Gill-Carey O. et al. Cross-sectional and longitudinal studies suggest pharmacological treatment used in patients with glucokinase mutations does not alter glycaemia. Diabetologia. 2014; 57(1): 54–56. doi: 10.1007/s00125-013-3075-x.
  9. Воевода М.И., Рымар О.Д., Шатшнейдер Е.А. с соавт. Диагностика и ведение пациентов с диабетом MODY: методические рекомендации для врачей. Н.: Издательство СО РАН. 2020; 48 с. [Voevoda M.I., Rymar O.D., Shatshneider E.A. et al. Diagnosis and management of patients with diabetes MODY: guidelines for doctors. N: Publishing house of the SB RAS. 2020; 48 pp. (In Russ.)].
  10. Bach I., Mattei M.G., Cereghini S., Yaniv M. Two members of an HNF1 homeoprotein family are expressed in human liver. Nucleic Acids Res. 1991; 19(13): 3553–59. doi: 10.1093/nar/19.13.3553.
  11. Chi Y.I., Frantz J.D., Oh B.C. et al. Diabetes mutations delineate an atypical POU domain in HNF-1alpha. Mol Cell. 2002; 10(5): 1129–37. doi: 10.1016/s1097-2765(02)00704-9.
  12. Vaxillaire M., Abderrahmani A., Boutin P. et al. Anatomy of a homeoprotein revealed by the analysis of human MODY3 mutations. J Biol Chem. 1999; 274(50): 35639–46. doi: 10.1074/jbc.274.50.35639.
  13. Bach I., Yaniv M. More potent transcriptional activators or a transdominant inhibitor of the HNF1 homeoprotein family are generated by alternative RNA processing. EMBO J. 1993; 12(11): 4229–42. Erratum in: EMBO J 1994; 13(2): 492.
  14. Pontoglio M., Sreenan S., Roe M. et al. Defective insulin secretion in hepatocyte nuclear factor 1alpha-deficient mice. J Clin Invest. 1998; 101(10): 2215–22. doi: 10.1172/JCI2548.
  15. Pontoglio M. Hepatocyte nuclear factor 1, a transcription factor at the crossroads of glucose homeostasis. J Am Soc Nephrol. 2000; 11 Suppl 16: S140–43.
  16. Harries L.W., Ellard S., Stride A. et al. Isomers of the TCF1 gene encoding hepatocyte nuclear factor-1 alpha show differential expression in the pancreas and define the relationship between mutation position and clinical phenotype in monogenic diabetes. Hum Mol Genet. 2006; 15(14): 2216–24. doi: 10.1093/hmg/ddl147.
  17. Shepherd M., Ellis I., Ahmad A.M. et al. Predictive genetic testing in maturity-onset diabetes of the young (MODY). Diabet Med. 2001; 18(5): 417–21. doi: 10.1046/j.1464-5491.2001.00447.x.
  18. Owen K.R., Shepherd M., Stride A. et al. Heterogeneity in young adult onset diabetes: Aetiology alters clinical characteristics. Diabet Med. 2002; 19(9): 758–61. doi: 10.1046/j.1464-5491.2002.00766.x.
  19. Sambrook J., Russell D.W. Purification of nucleic acids by extraction with phenol: Chloroform. CSH Protoc. 2006; 2006(1): pdb.prot4455. doi: 10.1101/pdb.prot4455.
  20. Ivanoshchuk D.E., Shakhtshneider E.V., Rymar O.D. et al. The mutation spectrum of maturity onset diabetes of the young (MODY)-associated genes among Western Siberia patients. J Pers Med. 2021; 11(1): 57. doi: 10.3390/jpm11010057.
  21. Pajak A., Szafraniec K., Kubinova R. et al. Binge drinking and blood pressure: cross-sectional results of the HAPIEE study. PLoS One. 2013; 8(6): e65856. doi: 10.1371/journal.pone.0065856.
  22. Баранова А. А., Друк И. В., Овсянникова А. К. Описание клинических случаев семейной формы сахарного диабета HNF1A-MODY. Лечащий врач. 2020; 12: 35–40. [Baranova A.A., Druk I.V., Ovsyannikova A.K. Description of clinical cases of the familial form of HNF1A-MODY diabetes mellitus. Lechashchiy vrach = Attending physician. 2020; 12: 35–40 (In Russ.)]. https://dx.doi.org/10.26295/OS.2020.13.48.008.
  23. Hegele R.A., Cao H., Harris S.B. et al. The hepatic nuclear factor-1 alpha G319S variant is associated with early-onset type 2 diabetes in Canadian Oji-Cree. J Clin Endocrinol Metab. 1999; 84(3): 1077–82. doi: 10.1210/jcem.84.3.5528.
  24. Harris S.B., Gittelsohn J., Hanley A. et al. The prevalence of NIDDM and associated risk factors in native Canadians. Diabetes Care. 1997; 20(2): 185–87. doi: 10.2337/diacare.20.2.185.
  25. Lau H.H., Ng N.H.J., Loo L.S.W. et al. The molecular functions of hepatocyte nuclear factors – in and beyond the liver. J Hepatol. 2018; 68(5): 1033–48. doi: 10.1016/j.jhep.2017.11.026.
  26. Hegele R.A., Cao H., Harris S.B. et al. The private hepatocyte nuclear factor-1alpha G319S variant is associated with plasma lipoprotein variation in Canadian Oji-Cree. Arterioscler Thromb Vasc Biol. 2000; 20(1): 217–22. doi: 10.1161/01.atv.20.1.217.
  27. Harries L.W., Sloman M.J., Sellers E.A. et al. Diabetes susceptibility in the Canadian Oji-Cree population is moderated by abnormal mRNA processing of HNF1A G319S transcripts. Diabetes. 2008; 57(7): 1978–82. doi: 10.2337/db07-1663.
  28. GoodSmith M.S., Skandari M.R., Huang E.S., Naylor R.N. The impact of biomarker screening and cascade genetic testing on the cost-effectiveness of MODY genetic testing. Diabetes Care. 2019; 42(12): 2247–55. doi: 10.2337/dc19-0486.

About the Authors

Dinara E. Ivanoshchuk, junior researcher of Federal Research Center Institute of Cytology and Genetics of Siberian Branch of the Russian Academy of Sciences, researcher of the Research Institute of Therapy and Preventive Medicine – a branch of Federal Research Center Institute of Cytology and Genetics of Siberian Branch of the Russian Academy of Sciences. Address: 630090, Novosibirsk, 10 Akademika Lavrentieva Avenue. Tel.: +7 (961) 874-12-16. E-mail: dinara2084@mail.ru. ORCID: 0000-0002-0403-545X
Svetlana V. Mikhailova, PhD, researcher of Federal Research Center Institute of Cytology and Genetics of Siberian Branch of the Russian Academy of Sciences. Address: Novosibirsk, 10 Prospect Akademika Lavrentieva Avenue. Tel.: +7 (913) 910-24-63. E-mail: mikhail@bionet.nsc.ru. ORCID: 0000-0002-0897-5473
Alla K. Ovsyannikova, PhD, senior researcher of the Research Institute of Therapy and Preventive Medicine – a branch of Federal Research Center Institute of Cytology and Genetics of Siberian Branch of the Russian Academy of Sciences. Address: 630089, Novosibirsk, 175/1 Borisa Bogatkova Str. Tel.: +7 (383) 373-09-89. E-mail: aknikolaeva@bk.ru. ORCID: 0000-0002-9669-745X
Elena V. Shakhtshneider, PhD, deputy head of scientific work, Research Institute of Therapy and Preventive Medicine – a branch of Federal Research Center Institute of Cytology and Genetics of Siberian Branch of the Russian Academy of Sciences, head of the sector for the study of monogenic forms of common human diseases, Federal Research Center Institute of Cytology and Genetics of Siberian Branch of the Russian Academy of Sciences. Address: 630089, Novosibirsk, 175/1 Borisa Bogatkova Str. Tel..: +7 (383) 373-09-82. E-mail: 2117409@mail.ru. ORCID: 0000-0001-6108-1025
Inna V. Druk, MD, associate professor, head of the Department of internal diseases and family medicine, Omsk State Medical University of the Ministry of Healthcare of Russia. Address: 644033, Omsk, 127/1 Krasny Put` Str. Tel.: +7 (381) 249-20-85. E-mail: osma-genpract@yandex.ru. ORCID: 0000-0001-8317-7765
Oksana D. Rymar, MD, head of the laboratory of clinical-population and preventive studies of therapeutic and endocrine diseases, Research Institute of Therapy and Preventive Medicine – a branch of Federal Research Center Institute of Cytology and Genetics of Siberian Branch of the Russian Academy of Sciences. Address: 630089, Novosibirsk, 175/1 Borisa Bogatkova Str. Tel.: +7 (383) 373-09-89. E-mail: orymar23@gmail.com. ORCID: 0000-0003-4095-0169
Mikhail I. Voevoda, MD, professor, academician of RAS, Director of Federal Research Center for Fundamental and Translational Medicine. Address: 630117, Novosibirsk, 2 Timakova Str. E-mail: mvoevoda@ya.ru. ORCID: 0000-0003-4716-876X

Similar Articles

By continuing to use our site, you consent to the processing of cookies that ensure the proper functioning of the site.