ISSN 2412-4036 (print)
ISSN 2713-1823 (online)

Neuroinflammation and thromboinflammation in cerebrovascular disease and vascular cognitive impairment

Koltsov I.A., Shchukin I.A., Chubykin V.I., Fidler M.S.

1) Federal Center of Brain Research and Neurotechnologies of FMBA of Russia, Moscow; 2) N.I. Pirogov Russian National Research Medical University of the Ministry of Healthcare of Russia, Moscow
Abstract. Recently, researchers and clinicians have been paying increasing attention to the concept of thromboinflammation, i.e., a dysregulation of thrombosis and inflammation equilibrium, with the transition to a prothrombotic and proinflammatory phenotype. Thromboinflammation plays an important role in the development and progression of cerebrovascular diseases. In acute and chronic ischemic damage to the brain, several pathological processes are activated, leading to the depletion of all neural cell pools and irreversible neural pathway damage, manifesting as focal neurological deficits and cognitive decline. These closely interconnected pathological processes include neuroinflammation, oxidative stress, blood-brain barrier damage with neurovascular unit metabolic decoupling, intrinsic and extrinsic apoptosis. This review covers the interrelation between neuroinflammation and thrombosis within the thromboinflammation concept.

Keywords

thromboinflammation
cerebrovascular diseases
hemostasis
neuroinflammation
cognitive impairment

ВВЕДЕНИЕ

Иммунотромбоз и тромбовоспаление – это концепции, описывающие тесную взаимозависимость воспаления и процессов активации системы гемостаза. Впервые в современном виде термин «иммунотромбоз» был предложен Engelmann B. и Massberg S. [1] для описания процесса вовлечения гемостаза в механизмы системы врожденного иммунитета, при котором в ответ на воспалительные изменения происходит контролируемое формирование микротромбозов с целью изоляции инфекционного агента. Под термином «тромбовоспаление» в настоящее время понимают дисрегуляцию физиологических процессов иммунотромбоза с системным переходом организма к протромботическому и провоспалительному фенотипу, что особенно важно при сосудистых заболеваниях, в том числе цереброваскулярной патологии [2].

Сосудистые когнитивные нарушения представляют собой гетерогенную группу церебральной патологии, имеющей множество различных причин. В соответствии с принятой в 2018 г. классификацией VICCCS [3], сосудистые когнитивные нарушения, включая сосудистую деменцию, можно разделить на 4 группы: постинсультная деменция, подкорковое ишемическое когнитивное снижение и деменция, мультиинфарктная деменция и смешанная деменция. В случае как острого, так и хронического ишемического повреждения вещества головного мозга запускается ряд патофизиологических процессов, приводящих в конечном итоге к гибели всех пулов церебральных клеток и необратимому повреждению проводящих путей, что клинически проявляется не только развитием очаговой неврологической симптоматики, но и когнитивными нарушениями. К таким взаимосвязанным процессам традиционно относят нейровоспаление, окислительный стресс, повреждение гематоэнцефалического барьера (ГЭБ) и разобщение метаболических связей между структурами нейрососудистой единицы, запуск прямого или опосредованного апоптоза [4]. В данном обзоре будут рассмотрены взаимосвязи нейровоспаления и активации системы гемостаза в рамках концепции тромбовоспаления.

МЕХАНИЗМЫ НЕЙРОВОСПАЛЕНИЯ

Принципиально различать два связанных ключевых патофизиологических механизма сосудистого церебрального повреждения – церебральную ишемию и гипоксию. Ишемия характеризуется снижением мозгового кровотока, тогда как гипоксия – это недостаток кислорода, процесс, вытекающий из ишемии [5]. Ишемия запускает нейровоспаление – процесс, характеризующийся активацией клеток врожденного иммунитета и глиальных клеток. Биомаркеры нейровоспаления были найдены в плазме и цереброспинальной жидкости пациентов с сосудистыми когнитивными нарушениями [6]. В экспериментальной работе Gervois P. et al. (2019) было показано, что у животных с моделью церебральной ишемии и гипоперфузии отмечается активация иммунных реакций, связанных с потерей белого вещества и гибелью нейронов; кроме того, такие морфологические изменения коррелировали с ухудшением обучаемости и памяти [7].

Запуск процессов нейровоспаления характеризуется 4 основными механизмами: активацией микроглии, повышением уровня цитокинов и хемокинов, накоплением периферических иммунных клеток и локальным повреждением вещества головного мозга [8]. Церебральное повреждение вызывает нарастание в веществе головного мозга целого ряда провоспалительных субстанций (цитокинов и хемокинов, свободных радикалов, вторичных мессенджеров, компонентов поврежденных клеток), которые активируют микроглию. Микроглия приобретает амебовидное состояние и сама начинает продуцировать провоспалительные цитокины и активные формы кислорода, тем самым усугубляя нейровоспаление и повреждение вещества головного мозга [9]. В условиях ишемического повреждения на начальном этапе нейровоспаление характеризуется тем, что активированная микроглия поглощает части погибших и фрагментированных клеток; далее происходит гиперпродукция свободных радикалов, стимулирующих экспрессию провоспалительных медиаторов (цитокинов, хемокинов, молекул адгезии и т.д.); на следующем этапе провоспалительные цитокины и активные формы кислорода приводят к повреждению митохондрий, ДНК, запуску апоптоза и разрушению ГЭБ; восстановление поврежденных тканей начинается тогда, когда уровень провоспалительных медиаторов снижается, активируется ангиогенез, нормализуется трофика церебральных клеток [10].

Гипоксия способствует нарастанию нейровоспаления, что характеризуется увеличением зоны ишемического повреждения и снижением процессов нейропластичности [11]. Гипоксия влечет за собой нарастание экспрессии фактора транскрипции, индуцируемого гипоксией, в частности, изоформы 1α (HIF-1α). В дальнейшем это способствует увеличению экспрессии провоспалительных цитокинов, например ядерного фактора NF-κB, что, в свою очередь, приводит к экспрессии других ответственных за воспаление генов [12]. Наряду с этим гипоксия негативно влияет на экспрессию регуляторной микроРНК, ответственной за активацию микроглии [13].

Клетки врожденного иммунитета необходимы для нормального функционирования головного мозга. Различные типы клеток, включая нейроны, микроглию и астроциты, формируют специфическую систему, поддерживающую иммунную защиту головного мозга и направленную на элиминацию экзогенных и эндогенных патологических белков и клеток [14]. В центральной нервной системе (ЦНС) среди глиальных клеток на долю астроцитов приходится порядка 19–40%, микроглиальные клетки составляют около 10%, олигодендроциты – от 45 до 75%. Остальные клетки, обозначаемые как NG2, являются предшественниками олигодендроцитов [15]. В ряде исследований было показано, что в условиях экспериментальной модели церебральной гипоперфузии отмечается активация глиальных клеток, вызывающая запуск процессов нейровоспаления, повреждение белого вещества (преимущественно в мозолистом теле), потерю нейронов в ключевых зонах мозга, например, в гиппокампе, с последующим развитием когнитивных нарушений [16, 17].

Микроглия – клетка врожденного иммунитета, находящаяся в пределах ЦНС и представляющая собой фагоцит. Основной ее функцией является удаление из ЦНС нежелательных соединений как при развитии головного мозга, так и в патологических условиях [18]. Микроглия – важнейшая клетка нейрососудистой единицы, которая контролирует церебральный гомеостаз, незамедлительно активируясь при возникновении повреждения или инфекции [19]. В ряде экспериментальных исследований, посвященных хронической церебральной гипоперфузии, было продемонстрировано, что микроглия в активированном состоянии может приобретать два взаимно противоположных фенотипа – провоспалительный (M1) и противовоспалительный (M2) [20]. В исследовании Zhang L.-Y. et al. на модели билатеральной перевязки общих сонных артерий у грызунов (эта модель, учитывая замк­нутость Виллизиева круга у большинства грызунов, в достаточной мере соответствует хроническому состоянию церебральной гипоперфузии) было обнаружено, что микроглия активируется и активно фагоцитирует миелин. Данный процесс имел сильную корреляционную связь с активацией системы комплемента и нарушением процессов памяти и обучения, кроме того, в основной группе животных в веществе головного мозга значимо нарастали экспрессия рецепторов-маркеров провоспалительного статуса микроглии (CD86 и CD16), уровень провоспалительных цитокинов интерлейкина 6 (ИЛ-6), фактора некроза опухоли-альфа (ФНО-α) и ИЛ-1β [21]. В другом исследовании было установлено, что на третий день после моделирования хронической церебральной гипоперфузии в микроглии, локализующейся преимущественно в белом веществе, нарастает экспрессия МНС-I и МНС- II (основных молекул главного комплекса гистосовместимости, служащих ключевыми маркерами поврежденных клеток), а также уровень матриксной металлопротеиназы II [22]. В клинических условиях было показано, что у пациентов с сосудистыми когнитивными нарушениями наблюдается высокий уровень матриксных металлопротеиназ [23].

Астроциты, наряду с микроглией, также вовлечены в процесс нейровоспаления при сосудистых когнитивных нарушениях. Так, в экспериментальном исследовании Price B.R. et al. на модели гипергомоцистеинемии, одного из ключевых сосудистых факторов риска, было продемонстрировано, что уже через 10 нед диеты с исключением витаминов В6, В12 и фолиевой кислоты выявляется разрушение астроцитарных ножек (значимо снижалась экспрессия ключевых белков астроцитов: дистрофина-1, AQP4, Kir4.1 и MaxiK/BK), причем эти изменения прямо коррелировали с прогрессированием когнитивных нарушений. Также исследователи обнаружили значимую активацию микроглии (нарастание экспрессии микроглиального маркера CD11b) и высокий уровень провоспалительных цитокинов ИЛ-1β, NF-κB, ИЛ-12 и ИЛ-6 [24]. В другом исследовании, также выполненном на модели гипергомоцистеинемии, авторы выявили в астроцитах высокий уровень экспрессии матриксной металлопротеиназы 9, фермента, ответственного за разрушение α- и β-дистрогликанов, белков, связывающих астроцитарные ножки с базальной мембраной капилляров [25]. Олигодендроциты также страдают в условиях хронической церебральной гипоперфузии: так, в экспериментальной работе Dean J.M. et al. было установлено значимое снижение количества прогениторных клеток олигодендроцитов [26].

Таким образом, как было описано выше, при сосудистых когнитивных нарушениях отмечается значимое повышение ряда провоспалительных медиаторов, которые определят запуск целого ряда вне- и внутриклеточных сигнальных путей, приводящих к повреждению клеток и проводящих путей головного мозга. Высокий уровень экспрессии таких провоспалительных цитокинов, как ИЛ-1β, ИЛ-6, ФНО-α, наряду с активацией окислительного стресса был показан в условиях экспериментального моделирования хронической церебральной гипоперфузии [27].

ВЗАИМОСВЯЗЬ ТРОМБОЗА И НЕЙРОВОСПАЛЕНИЯ

Существует множество потенциальных точек взаимодействия между тромбозом и воспалением. Все подобные механизмы участвуют в повреждении вещества головного мозга не только вследствие ишемии на фоне нарушения церебрального кровотока при тромбообразовании, но и за счет вторичных механизмов. Наиболее изученными из таких аспектов тромбовоспаления являются [28]:

1. механизмы, связанные с активностью фактора Виллебранда (ФВ) и тромбоцитами;

2. механизмы, связанные с системой контактного пути свертывания крови и кинин-калликреиновой системой;

3. механизмы, связанные с клеточными компонентами врожденного иммунитета.

Одна из ведущих функций ФВ в норме – обеспечение адгезии тромбоцитов [29]. Секреция молекул ФВ в значительной мере осуществляется эндотелиоцитами. Взаимодействуя с коллагеном, ламинином и иными компонентами субэндотелиального матрикса в условиях высокого напряжения сдвига [30, 31], ФВ прикрепляется к поврежденной сосудистой стенке и создает условия для многоступенчатого процесса адгезии тромбоцитов. Сначала возникает быстро формирующаяся обратимая связь ФВ и тромбоцитарного рецептора GpIb-IX-V, скорость движения тромбоцитов в потоке крови снижается, и далее происходит необратимая фиксация ФВ к тромбоцитарному интегрину αIIbβ3 [30, 32]. После этого тромбоциты дополнительно прикрепляются к коллагену, ламинину и иным компонентам субэндотелиального матрикса при помощи рецептора GpVI [29–31, 33].

Имеется достаточно данных, полученных в экспериментальных и клинических условиях, которые свидетельствуют о важной роли ФВ как связующего звена между тромбозом и воспалением. Так, ФВ, находящийся в эндотелиоцитах, участвует в регуляции внутриклеточной сортировки P-селектина, ИЛ-8 [34, 35]. В свою очередь, ИЛ-8 и ФНО-α способны вызывать секрецию высокомолекулярной высокотромбогенной формы ФВ [36], образуя таким образом механизм положительной обратной связи. Кроме того, ФВ может обеспечивать локальную адгезию лейкоцитов, моноцитов и сегментоядерных нейтрофилов [37, 38] и выступать в качестве области прикрепления таких провоспалительных агентов, как компоненты альтернативного пути системы комплемента [39] и нейтрофильные внеклеточные ловушки, активно образуемые нейтрофилами при их активации [37]. Также следует отметить, что активация альтернативного пути системы комплемента приводит и к активации микроглии [40]. В систематическом обзоре и метаанализе Loures C.M.G. et al. было показано, что при сосудистой деменции отмечается более высокая системная концентрация ФВ при сопоставлении с группой контроля [41].

Фиксация тромбоцитов к сосудистой стенке с последующей их активацией приводит к ряду провоспалительных изменений. Так происходит образование тромбоцитарных микрочастиц (микровезикул, экзосом) с провоспалительной и протромботической активностью [42]. Вовлечение тромбоцитарного гликопротеина GpVI связано с повышением цитотоксической активности нейтрофилов [43]. Активированные тромбоциты секретируют ряд провоспалительных соединений, таких как ИЛ-1α, ИЛ-1β, трансформирующий фактор роста TGF-β, гистамин, серотонин, растворимый лиганд CD40 (CD40L) [44–46]. Предполагается, что модуляция процессов нейровоспаления активированными тромбоцитами вносит важный вклад в формирование сосудистых когнитивных нарушений у пациентов с сосудистыми факторами риска [47].

Механизмы тромбовоспаления, связанные с системой контактного пути свертывания крови и кинин-калликреиновой системой, в настоящий момент изучены недостаточно. Тем не менее существующие исследования подтверждают их важную связующую роль между процессами коагуляции и воспаления [48]. Активация этих систем происходит при контакте XII фактора свертывания с негативно заряженными чужеродными поверхностями или же с микрочастицами полифосфатов на поверхности активированных тромбоцитов [49]. Активированный фактор XII не только обеспечивает запуск процесса коагуляции через активацию XI фактора, но и конвертирует прекалликреин плазмы крови в калликреин, который, в свою очередь, расщепляет кининоген до брадикинина, обладающего значительной провоспалительной активностью [28]. Кроме того, калликреин плазмы активирует фактор XII в плазме по механизму положительной обратной связи, что дополнительно усиливает воспалительный ответ [28]. Провоспалительные эффекты кининовой системы реализуются через активацию брадикининовых рецепторов B1R и B2R, а инактивация B1R оказывает защитное действие, уменьшая локальный постишемический воспалительный ответ и отек вещества головного мозга [50]. Было продемонстрировано, что активация калликреин-кининовой системы в модели ишемического инсульта у мышей усиливала явления микротромбоза, нейровоспаления с повышением проницаемости ГЭБ [51]. Также выявлено, что активация калликреин-кининовой системы вносит значимый вклад в прогрессирование когнитивных нарушений сосудистого генеза [52].

Клетки, вовлеченные в реализацию функций врожденного иммунитета, не только обеспечивают защитные функции организма, но и участвуют во множестве патологических реакций, включая нейровоспаление. Одну из ведущих ролей в нейровоспалении играют нейтрофилы, при избыточной активации которых происходит повышение проницаемости ГЭБ, усиление отека вещества головного мозга; помимо этого, протеолитические ферменты нейтрофилов оказывают прямое нейротоксическое действие [53]. Активированные тромбоциты выделяют хемокины, такие как CCL5, CXCL4, CXCL5 и MIF [2], способствующие локальному привлечению нейтрофилов; более того, как говорилось выше, этому процессу также способствует активация ФВ. Нейтрофилы, взаимодействуя с поврежденной эндотелиальной выстилкой, в свою очередь инициируют процесс тромбообразования через механизмы, связанные с тканевым фактором [54], а нейтрофильные сериновые протеазы, включая эластазу, взаимодействуют с факторами свертывания плазмы крови, вызывая запуск процессов коагуляционного гемостаза [55]. Наряду с этим субъединица GPIbα тромбоцитарного интегрина GpIb-IX-V напрямую взаимодействует с интегрином αMβ2 на поверхности нейтрофилов, что способствует усилению тромбообразования [56] и тромбоцит-индуцированной секреции высокотромбогенных нейтрофильных внеклеточных ловушек [2].

Взаимодействие тромбоцитов и нейтрофилов усиливается за счет нескольких систем положительной обратной связи, в том числе за счет секреции нейтрофилами кателицидинов, связывающихся с поверхностью тромбоцитов и вызывающих их дегрануляцию с секрецией медиаторов воспаления [57]. В свою очередь тромбоциты после взаимодействия с кателицидинами индуцируют активацию нейтрофилов и выделение нейтрофильных внеклеточных ловушек [57]. Одним из важнейших следствий активации нейтрофилов становится нарушение проницаемости ГЭБ и их миграция в ЦНС, что в конечном итоге индуцирует процессы нейродегенерации и усиливает прогрессирование когнитивного снижения [58].

ЗАКЛЮЧЕНИЕ

Таким образом, существует достаточно данных, свидетельствующих о том, что процессы тромбоза и воспаления тесно взаимосвязаны друг с другом и играют важную роль в патофизиологии церебральной ишемии. Активация общих механизмов, описываемых в рамках концепции тромбовоспаления, является важным фактором повреждения вещества головного мозга. Это указывает на необходимость комплексного мультимодального подхода к ведению пациентов с цереброваскулярными заболеваниями, в особенности при наличии сосудистых когнитивных нарушений. Возможные подходы к коррекции тромбовоспаления требуют дальнейшего изучения, а поиск новых терапевтических мишеней для его коррекции остается одним из приоритетных направлений для изучения при цереброваскулярных заболеваниях. Такие потенциальные подходы к профилактике или модификации процесса прогрессирования церебрального поражения сосудистого генеза, как коррекция активности ФВ, модуляция активности XII фактора свертывания и коррекция взаимодействия тромбоцит–нейтрофил, могут служить перспективными направлениями для изучения в будущих клинических исследованиях.

References

1. Engelmann B., Massberg S. Thrombosis as an intravascular effector of innate immunity. Nat Rev Immunol. 2013; 13(1): 34–45.https://dx.doi.org/10.1038/nri3345.

2. Stark K., Massberg S. Interplay between inflammation and thrombosis in cardiovascular pathology. Nat Rev Cardiol. 2021; 18(9): 666–82. https://dx.doi.org/10.1038/s41569-021-00552-1

3. Skrobot O.A., Black S.E., Chen C. et al. Progress toward standardized diagnosis of vascular cognitive impairment: Guidelines from the Vascular Impairment of Cognition Classification Consensus Study. Alzheimers Dement J Alzheimers Assoc. 2018; 14(3): 280–92. https://dx.doi.org/10.1016/j.jalz.2017.09.007.

4. Anrather J., Iadecola C. Inflammation and stroke: An overview. Neurother J Am Soc Exp Neurother. 2016; 13(4): 661–70.https://dx.doi.org/10.1007/s13311-016-0483-x.

5. Nalivaeva N.N., Rybnikova E.A. Editorial: Brain hypoxia and ischemia: New insights into neurodegeneration and neuroprotection. Front Neurosci. 2019; 13: 770. https://dx.doi.org/10.3389/fnins.2019.00770.

6. Engelhart M.J., Geerlings M.I., Meijer J. et al. Inflammatory proteins in plasma and the risk of dementia: The Rotterdam study. Arch Neurol. 2004; 61(5): 668–72. https://dx.doi.org/10.1001/archneur.61.5.668.

7. Gervois P., Lambrichts I. The emerging role of triggering receptor expressed on myeloid cells 2 as a target for immunomodulation in ischemic stroke. Front Immunol. 2019; 10: 1668. https://dx.doi.org/10.3389/fimmu.2019.01668.

8. Belarbi K., Cuvelier E., Bonte M.-A. et al. Glycosphingolipids and neuroinflammation in Parkinson’s disease. Mol Neurodegener. 2020; 15(1): 59. https://dx.doi.org/10.1186/s13024-020-00408-1.

9. DiSabato D.J., Quan N., Godbout J.P. Neuroinflammation: The devil is in the details. J Neurochem. 2016; 139 Suppl 2: 136–53.https://dx.doi.org/10.1111/jnc.13607.

10. Lin L., Wang X., Yu Z. Ischemia-reperfusion injury in the brain: Mechanisms and potential therapeutic strategies. Biochem Pharmacol Open Access. 2016; 5(4): 213. https://dx.doi.org/10.4172/2167-0501.1000213.

11. Imtiyaz H.Z., Simon M.C. Hypoxia-inducible factors as essential regulators of inflammation. Curr Top Microbiol Immunol. 2010; 345: 105–20. https://dx.doi.org/10.1007/82_2010_74.

12. Davies A.L., Desai R.A., Bloomfield P.S. et al. Neurological deficits caused by tissue hypoxia in neuroinflammatory disease. Ann Neurol. 2013; 74(6): 815–25. https://dx.doi.org/10.1002/ana.24006.

13. Khoshnam S.E., Winlow W., Farzaneh M. The interplay of MicroRNAs in the inflammatory mechanisms following ischemic stroke. J Neuropathol Exp Neurol. 2017; 76(7): 548–61. https://dx.doi.org/10.1093/jnen/nlx036.

14. Zhang S.-Z., Wang Q.-Q., Yang Q.-Q. et al. NG2 glia regulate brain innate immunity via TGF-β2/TGFBR2 axis. BMC Med. 2019; 17(1): 204. https://dx.doi.org/10.1186/s12916-019-1439-x.

15. Nishiyama A. Polydendrocytes: NG2 cells with many roles in development and repair of the CNS. Neurosci Rev J Bringing Neurobiol Neurol Psychiatry. 2007; 13(1): 62–76. https://dx.doi.org/10.1177/1073858406295586.

16. Xu X., Zhang B., Lu K. et al. Prevention of hippocampal neuronal damage and cognitive function deficits in vascular dementia by dextromethorphan. Mol Neurobiol. 2016; 53(5): 3494–502. https://dx.doi.org/10.1007/s12035-016-9786-5.

17. Farkas E., Luiten P.G.M., Bari F. Permanent, bilateral common carotid artery occlusion in the rat: a model for chronic cerebral hypoperfusion-related neurodegenerative diseases. Brain Res Rev. 2007; 54(1): 162–80.https://dx.doi.org/10.1016/j.brainresrev.2007.01.003.

18. Garaschuk O., Verkhratsky A. Physiology of microglia. Methods Mol Biol. 2019; 2034: 27–40.https://dx.doi.org/10.1007/978-1-4939-9658-2_3.

19. Hanisch U.-K., Kettenmann H. Microglia: Active sensor and versatile effector cells in the normal and pathologic brain. Nat Neurosci. 2007; 10(11): 1387–94. https://dx.doi.org/10.1038/nn1997.

20. Fernando M.S., Simpson J.E., Matthews F. et al. White matter lesions in an unselected cohort of the elderly: molecular pathology suggests origin from chronic hypoperfusion injury. Stroke. 2006; 37(6): 1391–98. https://dx.doi.org/10.1161/01.STR.0000221308.94473.14.

21. Zhang L.-Y., Pan J., Mamtilahun M. et al. Microglia exacerbate white matter injury via complement C3/C3aR pathway after hypoperfusion. Theranostics. 2020; 10(1): 74–90. https://dx.doi.org/10.7150/thno.35841.

22. Ma Y., Wang J., Wang Y., Yang G.-Y. The biphasic function of microglia in ischemic stroke. Prog Neurobiol. 2017; 157: 247–72.https://dx.doi.org/10.1016/j.pneurobio.2016.01.005.

23. Bjerke M., Zetterberg H., Edman A. et al. Cerebrospinal fluid matrix metalloproteinases and tissue inhibitor of metalloproteinases in combination with subcortical and cortical biomarkers in vascular dementia and Alzheimer’s disease. J Alzheimers Dis JAD. 2011; 27(3): 665–76. https://dx.doi.org/10.3233/JAD-2011-110566.

24. Price B.R., Norris C.M., Sompol P., Wilcock D.M. An emerging role of astrocytes in vascular contributions to cognitive impairment and dementia. J Neurochem. 2018; 144(5): 644–50. https://dx.doi.org/10.1111/jnc.14273.

25. Michaluk P., Kolodziej L., Mioduszewska B. et al. Beta-dystroglycan as a target for MMP-9, in response to enhanced neuronal activity. J Biol Chem. 2007; 282(22): 16036–41. https://dx.doi.org/10.1074/jbc.M700641200.

26. Dean J.M., van de Looij Y., Sizonenko S.V. et al. Delayed cortical impairment following lipopolysaccharide exposure in preterm fetal sheep. Ann Neurol. 2011; 70(5): 846–56. https://dx.doi.org/10.1002/ana.22480.

27. Fu X., Zhang J., Guo L. et al. Protective role of luteolin against cognitive dysfunction induced by chronic cerebral hypoperfusion in rats. Pharmacol Biochem Behav. 2014; 126: 122–30. https://dx.doi.org/10.1016/j.pbb.2014.09.005.

28. De Meyer S.F., Denorme F., Langhauser F. et al. Thromboinflammation in stroke brain damage. Stroke. 2016; 47(4): 1165–72.https://dx.doi.org/10.1161/STROKEAHA.115.011238.

29. Rauch A., Wohner N., Christophe O.D. et al. On the versatility of von Willebrand factor. Mediterr J Hematol Infect Dis. 2013; 5(1): e2013046. https://dx.doi.org/10.4084/MJHID.2013.046.

30. Sadler J.E. Biochemistry and genetics of von Willebrand factor. Annu Rev Biochem. 1998; 67: 395–424.https://dx.doi.org/10.1146/annurev.biochem.67.1.395.

31. Inoue O., Suzuki-Inoue K., Ozaki Y. Redundant mechanism of platelet adhesion to laminin and collagen under flow - Involvement of von Willebrand factor and glycoprotein Ib-IX-V. J Biol Chem. 2008; 283(24): 16279–82. https://dx.doi.org/10.1074/jbc.C700241200.

32. Nieswandt B., Watson S.P. Platelet-collagen interaction: Is GPVI the central receptor? Blood. 2003; 102(2): 449–61.https://dx.doi.org/10.1182/blood-2002-12-3882.

33. Rumbaut R.E., Thiagarajan P. Platelet-vessel wall interactions in hemostasis and thrombosis. Morgan & Claypool Life Sciences. 2010. Accessed October 19, 2016. URL: http://www.ncbi.nlm.nih.gov/books/NBK53450/ (date of access – 01.11.2022).

34. Michaux G., Pullen T.J., Haberichter S.L., Cutler D.F. P-selectin binds to the D’–D3 domains of von Willebrand factor in Weibel–Palade bodies. Blood. 2006; 107(10): 3922–24. https://dx.doi.org/10.1182/blood-2005-09-3635.

35. Rondaij M.G., Bierings R., Kragt A. et al. Dynamics and plasticity of Weibel–Palade bodies in endothelial cells. Arterioscler Thromb Vasc Biol. 2006; 26(5): 1002–7. https://dx.doi.org/10.1161/01.ATV.0000209501.56852.6c.

36. Bernardo A., Ball C., Nolasco L. et al. Effects of inflammatory cytokines on the release and cleavage of the endothelial cell-derived ultralarge von Willebrand factor multimers under flow. Blood. 2004; 104(1): 100–6. https://dx.doi.org/10.1182/blood-2004-01-0107.

37. Gragnano F., Sperlongano S., Golia E. et al. The role of von Willebrand factor in vascular inflammation: From pathogenesis to targeted therapy. Mediators Inflamm. 2017; 2017: 5620314. https://dx.doi.org/10.1155/2017/5620314.

38. Pendu R., Terraube V., Christophe O.D. et al. P-selectin glycoprotein ligand 1 and beta 2-integrins cooperate in the adhesion of leukocytes to von Willebrand factor. Blood. 2006; 108(12): 3746–52. https://dx.doi.org/10.1182/blood-2006-03-010322.

39. Turner N.A., Moake J. Assembly and activation of alternative complement components on endothelial cell-anchored ultra-large von Willebrand factor links complement and hemostasis-thrombosis. Plos One. 2013; 8(3): e59372.https://dx.doi.org/10.1371/journal.pone.0059372.

40. Schartz N.D., Tenner A.J. The good, the bad, and the opportunities of the complement system in neurodegenerative disease. J Neuroinflammation. 2020; 17(1): 354. https://dx.doi.org/10.1186/s12974-020-02024-8.

41. Loures C.M.G., Duarte R.C.F., Silva M.V.F. et al. Hemostatic abnormalities in dementia: A systematic review and meta-analysis. Semin Thromb Hemost. 2019; 45(5): 514–22. https://dx.doi.org/10.1055/s-0039-1688444.

42. Lv J.-X., Kong Q., Ma X. Current advances in circulating inflammatory biomarkers in atherosclerosis and related cardio-cerebrovascular diseases. Chronic Dis Transl Med. 2017; 3(4): 207–12. https://dx.doi.org/10.1016/j.cdtm.2017.09.002.

43. Gros A., Syvannarath V., Lamrani L. et al. Single platelets seal neutrophil-induced vascular breaches via GPVI during immune-complex-mediated inflammation in mice. Blood. 2015; 126(8): 1017–26. https://dx.doi.org/10.1182/blood-2014-12-617159.

44. Duerschmied D., Bode C., Ahrens I. Immune functions of platelets. Thromb Haemost. 2014; 112(4): 678–91.https://dx.doi.org/10.1160/TH14-02-0146.

45. Thornton P., McColl B.W., Greenhalgh A. et al. Platelet interleukin-1alpha drives cerebrovascular inflammation. Blood. 2010; 115(17): 3632–39. https://dx.doi.org/10.1182/blood-2009-11-252643.

46. Ishikawa M., Vowinkel T., Stokes K.Y. et al. CD40/CD40 ligand signaling in mouse cerebral microvasculature after focal ischemia/reperfusion. Circulation. 2005; 111(13): 1690–96. https://dx.doi.org/10.1161/01.CIR.0000160349.42665.0C.

47. Stellos K., Katsiki N., Tatsidou P. et al. Association of platelet activation with vascular cognitive impairment: implications in dementia development? Curr Vasc Pharmacol. 2014; 12(1): 152–54. https://dx.doi.org/10.2174/157016111201140327164641.

48. Wu Y. Contact pathway of coagulation and inflammation. Thromb J. 2015; 13: 17. https://dx.doi.org//10.1186/s12959-015-0048-y.

49. Verhoef J.J.F., Barendrecht A.D., Nickel K.F. et al. Polyphosphate nanoparticles on the platelet surface trigger contact system activation. Blood. 2017; 129(12): 1707–17. https://dx.doi.org/10.1182/blood-2016-08-734988.

50. Austinat M., Braeuninger S., Pesquero J.B. et al. Blockade of bradykinin receptor B1 but not bradykinin receptor B2 provides protection from cerebral infarction and brain edema. Stroke. 2009; 40(1): 285–93. https://dx.doi.org/10.1161/STROKEAHA.108.526673.

51. Langhauser F., Gob E., Kraft P. et al. Kininogen deficiency protects from ischemic neurodegeneration in mice by reducing thrombosis, blood-brain barrier damage, and inflammation. Blood. 2012; 120(19): 4082–92. https://dx.doi.org/10.1182/blood-2012-06-440057.

52. Ashby E.L., Love S., Kehoe P.G. Assessment of activation of the plasma kallikrein-kinin system in frontal and temporal cortex in Alzheimer’s disease and vascular dementia. Neurobiol Aging. 2012; 33(7): 1345–55.https://dx.doi.org/10.1016/j.neurobiolaging.2010.09.024.

53. Sun Y., Langer H.F. Platelets, thromboinflammation and neurovascular disease. Front Immunol. 2022; 13: 843404.https://dx.doi.org/10.3389/fimmu.2022.843404.

54. Darbousset R., Thomas G.M., Mezouar S. et al. Tissue factor-positive neutrophils bind to injured endothelial wall and initiate thrombus formation. Blood. 2012; 120(10): 2133–43. https://dx.doi.org/10.1182/blood-2012-06-437772.

55. Massberg S., Grahl L., von Bruehl M.-L. et al. Reciprocal coupling of coagulation and innate immunity via neutrophil serine proteases. Nat Med. 2010; 16(8): 887–96. https://dx.doi.org/10.1038/nm.2184.

56. Wang Y., Gao H., Shi C. et al. Leukocyte integrin Mac-1 regulates thrombosis via interaction with platelet GPIbα. Nat Commun. 2017; 8: 15559. https://dx.doi.org/10.1038/ncomms15559.

57. Pircher J., Czermak T., Ehrlich A. et al. Cathelicidins prime platelets to mediate arterial thrombosis and tissue inflammation. Nat Commun. 2018; 9(1): 1523. https://dx.doi.org/10.1038/s41467-018-03925-2.

58. Bowman G.L., Dayon L., Kirkland R. et al. Blood-brain barrier breakdown, neuroinflammation, and cognitive decline in older adults. Alzheimers Dement J Alzheimers Assoc. 2018; 14(12): 1640–50. https://dx.doi.org/10.1016/j.jalz.2018.06.2857.

About the Authors

Ivan A. Koltsov, PhD in Medicine, senior researcher at the Department of neuroimmunology, Federal Center of Brain Research and Neurotechnologies of FMBA of Russia; senior researcher at Research laboratory of vascular diseases of the brain, assistant at the Department of neurology, neurosurgery and medical genetics of the Faculty of general medicine, N.I. Pirogov Russian National Research Medical University of the Ministry of Healthcare of Russia. Address: 117997, Moscow, 1 Ostrovityanova Str. E-mail: koltsov_ia@rsmu.ru. ORCID: https://orcid.org/0000-0002-9900-4073
Ivan A. Shchukin, PhD in Medicine, associate professor of the Department of neurology, neurosurgery and medical genetics of the Faculty of general medicine, N.I. Pirogov Russian National Research Medical University of the Ministry of Healthcare of Russia; senior researcher at the Department of neuroimmunology, Federal Center of Brain Research and Neurotechnologies of FMBA of Russia. Address: 117997, Moscow, 1 Ostrovityanova Str. E-mail: ivashchukin@gmail.com. ORCID: https://orcid.org/0000-0002-6308-9706
Vladimir I. Chubykin, assistant at the Department of neurology, neurosurgery and medical genetics of the Faculty of general medicine, senior researcher at Research laboratory of vascular diseases of the brain, N.I. Pirogov Russian National Research Medical University of the Ministry of Healthcare of Russia. Address: 117997, Moscow, 1 Ostrovityanova Str. E-mail: chub_vova@list.ru
Mikhail S. Fidler, assistant at the Department of neurology, neurosurgery and medical genetics of the Faculty of general medicine, N.I. Pirogov Russian National Research Medical University of the Ministry of Healthcare of Russia. Address: 117997, Moscow, 1 Ostrovityanova Str. E-mail: rbmi@mail.ru

Similar Articles

By continuing to use our site, you consent to the processing of cookies that ensure the proper functioning of the site.