ISSN 2412-4036 (print)
ISSN 2713-1823 (online)

The state of systemic and local immunity in acute nasopharyngitis with ARVI

Savlevich E.L., Simbirtsev A.S., Chistyakova G.N., Terekhina K.G., Batskalevich N.A.

1) Central State Medical Academy of Department for Presidential Affairs of Russian Federation, Moscow; 2) State Research Institute of Highly Pure biopreparations of FMBA, St. Petersburg; 3) Ural Scientific Research Institute for Maternal and Child Care, Yekaterinburg; 4) City Clinical Hospital No. 40, Yekaterinburg
Abstract. The purpose of this study was to investigate the parameters of local and systemic immunity in patients suffering from acute nasopharyngitis with intoxication at the disease onset.
Material and methods. The analysis of CD3-FITC/CD19-PE, CD3-FITC/CD4-PE, CD3-FITC/CD8-PE, and CD3-FITC/CD16+56-PE lymphocytes was conducted using flow cytometry of venous blood taken from 94 patients with acute nasopharyngitis and intoxication syndrome during the first 2 days of the disease, while radial immunodiffusion was applied to measure the concentration of serum IgG, IgM, and IgA immunoglobulins. The estimation of bactericidal activity in leucocytes and NADP oxidase system functioning in neutrophils was performed with the help of spontaneous and stimulated NBT tests. The level of secretory immunoglobulin A (sIgA) was determined in the nasal mucus using solid-phase enzyme immunoassay, whereas IL-1β, IL-6, IL-8 interleukins, and interferon-α were measured in both blood serum and nasal mucus.
Results and conclusion. The initial period of the disease was associated with only the decrease in the relative number of cytotoxic CD3+CD8+ T-lymphocytes, stimulated NBT test or nitroblue tetrazolium test, and intensification of phagocytic activity of monocytes. The investigation of the local immune parameters discovered the reduction of major factors of innate immunity in the mucus layer, i.e. interferon α and secretory IgA, together with the increase in all studied proinflammatory IL-1β, IL-6, and IL-8 cytokines in the nasal mucus. Apart from the IL-1 β increase, all blood serum parameters were within the normal limits.

Keywords

acute respiratory viral infection (ARVI)
systemic and local immune responses
interleukins
interferon
acute nasopharyngitis with intoxication syndrome
cytokines

Острые респираторные вирусные инфекции (ОРВИ) – широко распространенная группа острых воспалительных заболеваний органов дыхания, встречающаяся у лиц всех возрастов и характеризующаяся различными по форме и тяжести клиническими проявлениями. Несмотря на активное развитие медицины, ОРВИ и в настоящее время остается одной из актуальных и приоритетных проблем мирового здравоохранения, занимая ведущую позицию в структуре заболеваемости населения. В этой группе объединены патологические состояния с похожими клиническими признаками, обусловленными эпителиотропностью возбудителей, но с чрезвычайно разнообразной этиологией [1].

Современная медицина располагает множеством фармакологических препаратов, применяемых для лечения вирусных инфекций верхних дыхательных путей. Существенной особенностью лечения ОРВИ в России является бесконтрольное применение и продажа иммуномодулирующих средств, которых для профилактики и лечения ОРВИ зарегистрировано в нашей стране более сотни; к сожалению, без учета принципов доказательной медицины. Рост продаж иммуномодулирующих препаратов составляет 38% в год. При этом механизм действия этих лекарственных средств описан не полностью, или же в фармакодинамическом описании его, по сути, нет, а вместо этого приводится фраза о том, что «препарат обладает комплексным иммуномодулирующим, антиоксидантным действием, принимая участие в стимуляции антителообразования и синтеза разных видов интерферонов» [2].

В настоящий момент наблюдаются достаточно противоречивые сведения о сочетанных или изолированных изменениях локального и системного иммунитета при воспалительной патологии ЛОР-органов. При этом оториноларингологи в нашей стране в последнее время активно включают в схемы лечения разные иммуномодулирующие препараты при хроническом тонзиллите [3], полипозном риносинусите [5], хроническом ларингите, аденоидите, фарингите [6]. Однако при описании клинического эффекта того или иного препарата в оториноларингологии полноценных иммунологических исследований до и после окончания лечебных мероприятий не проводилось.

Лечение острых ринофарингитов на фоне ОРВИ проводится врачами общей практики, терапевтами, педиатрами, оториноларингологами. Основным принципом их терапии служит уменьшение тяжести клинических симптомов, профилактика развития осложнений и проявлений отдаленных отрицательных эффектов после перенесенного заболевания. Имеется много данных об использовании иммуномодуляторов при вирусных инфекциях [6, 7]. Для примера: в системе детских поликлиник Управления делами Президента РФ иммунотропные лекарственные средства при острых воспалительных заболеваниях верхних дыхательных путей назначались в 12,4% случаев [8]. Между тем вопрос назначения этих препаратов остается дискутабельным. Также не было найдено подтверждений наличия нарушений системного иммунитета у пациентов в начале заболевания ОРВИ, исключая больных с подтвержденным врожденным или приобретенным иммунодефицитом.

Цель исследования – изучить показатели местного и системного иммунитета у больных острым назофарингитом с интоксикационным синдромом в начальной стадии заболевания.

МАТЕРИАЛ И МЕТОДЫ

Проведено иммунологическое исследование 94 пациентов (36 мужчин и 58 женщин, средний возраст 37,8±12,2 лет), страдающих острым назофарингитом (ОНФ) с интоксикационным синдромом. Обследование выполнялось в день обращения пациента до начала лечения.

Критериями включения в исследование было наличие на момент обращения жалоб, симптомов и типичных признаков ОНФ при объективном осмотре и повышения температуры тела выше 37,1 °C. Наблюдалось острое начало заболевания с повышением температуры, наличием симптомов интоксикации в виде головной боли, миалгии или артралгии, слабости. Катаральные явления проявлялись в виде признаков воспаления слизистой оболочки носа, ротоглотки, гортани и трахеи и жалоб на першение, сухость задней стенки глотки, боль при глотании, сухой кашель, заложенность носа, чихание (87,23%), выделения из носа серозно-слизистого характера. Все пациенты были включены в исследование на 1-й или 2-й день от начала заболевания при условии отсутствия лечения к моменту обращения в Городскую клиническую больницу № 40 г. Екатеринбурга.

Основными критериями невключения в исследование служили возраст менее 18 лет, хронические воспалительные заболевания ЛОР-органов, наличие налетов на слизистой оболочке нёбных миндалин, респираторная аллергия, беременность, лечение иммуномодулирующими препаратами и антибиотиками в сроки менее чем за 3 мес до включения пациента в исследование, присутствие онкозаболеваний и аутоиммунной патологии. Для оценки выраженности катарального синдрома и морфологических изменений слизистой оболочки ЛОР-органов проводились эндоскопическое исследование полости носа, фарингоскопия, непрямая ларингоскопия и отоскопия.

Для иммунологического исследования у пациентов брали натощак венозную кровь. Методом проточной цитофлюориметрии на цитометре FACS Canto II (Becton Dickinson) в лаборатории клинической иммунологии Клинико-диагностического центра г. Екатеринбург осуществлялось иммунофенотипирование лимфоцитов с использованием пар моноклональных антител CD3-FITC/CD19-PE, CD3-FITC/CD4-PE, CD3-FITC/CD8-PE, CD3-FITC/CD16+56-PE (IO Test). Бактерицидную активность лейкоцитов оценивали с применением метода, разработанного в лаборатории клинической иммунологии Института иммунологии Минздрава России [9]. Лейкоциты выделяли в 3% растворе желатина в фосфатно-солевом буфере (PBS). В опытную лунку вносили 90 мкл живых ФИТЦ-меченых бактерий (St. aureus Cowan I), 20 мкл аутосыворотки и 90 мкл лейкоцитов в концентрации 2 млн в 1 мл. Смесь инкубировали 20 мин при 37 °С, лейкоциты осаждали в течение 1 мин при 200g, 2 раза отмывали PSB от несвязавшихся бактерий, ресуспендировали в 200 мкл PSB и инкубировали 1 ч при 37 °С. После остановки киллинга лейкоциты разрушали в течение 5–10 мин 0,2% раствором сапонина; бактерии осаждали центрифугированием при 1000g в течение 10 мин и ресуспендировали в 200 мкл PSB с 2,5 мкг пропидиума иодита (Sigma), окрашивающего только убитые клетки. Через 30–40 мин пробы анализировали на проточном цитометре FACScan (Becton Dickinson).

Функционирование НАДФ-оксидазной системы нейтрофилов изучали при помощи спонтанного и стимулированного НСТ-теста [10]. Состояние гуморального иммунитета оценивалось определением концентрации сывороточных иммуноглобулинов IgG, IgM, IgA в сыворотке крови методом радиальной иммунодиффузии (РИД) в агаре по Mancini с использованием моноспецифических и стандартных сывороток с известной концентрацией иммуноглобулинов производства Московского НИИ им. Гамалея. Содержание циркулирующих иммунных комплексов (ЦИК) определяли фотометрически после преципитации их 4% раствором полиэтиленгликоля-6000.

В сыворотке крови и носовой слизи оценивали содержание интерлейкинов (ИЛ)-1β, ИЛ-6, ИЛ-8, интерферона (ИФН)-α твердофазным иммуноферментным методом (ИФА) с использованием реактивов фирмы ООО «Цитокин» (г. Санкт-Петербург). Назальный секрет собирали на смоченный изотоническим раствором 0,9% натрия хлорида ватный тупфер, который помещали в средний носовой ход на 30 с, затем ватку переносили в пластиковую микропробирку с физиологическим раствором в объеме 0,75 мл и замораживали при температуре -70 °C. Перед исследованием производили быстрое размораживание. Пробирки центрифугировали в течение 10 мин при 1500 об./мин, в дальнейшем работали с надосадочной жидкостью. Определение секреторного иммуноглобулина класса A (sIgA) в слизистой оболочке носа выполняли с помощью тест-системы «IgA секреторный-ИФА-БЕСТ» серии А-8668 производства г. Новосибирск методом твердофазного ИФА с использованием моноклональных анти-IgА-антител, который входит в пероксидазный конъюгат, способный выявлять антитела, аффинно взаимодействующие с аллергенами, сорбированными на поверхности полистиролового планшета. Для группы контроля были взяты образцы носовой слизи 20 здоровых добровольцев, не имевших в момент взятия материала воспалительных явлений, не отличавшихся по полу и возрасту от группы пациентов с ОНФ и не соответствовавших критериев исключения.

Математическая обработка данных осуществлялась с использованием программы IBM SPSS Statistics 23.0. Все количественные признаки тестировали на соответствие их нормальному распределению (критерии Колмогорова и Шапиро–Уилка). Параметрические данные описаны в виде среднего значения и среднего квадратичного отклонения (±), непараметрические выражены через медиану с 25-м и 75-м процентилями. Для сравнения распределений числовых показателей в двух сравниваемых группах использовали дисперсионный анализ и непараметрический критерий Манна–Уитни.

РЕЗУЛЬТАТЫ

У всех пациентов с ОНФ в день обращения частота встречаемости проявлений интоксикационного синдрома была следующей: повышение температуры тела выше 38,0 °С наблюдалось в 54,22% (n=51), головная боль – в 88,3% (n=83), миалгия и артралгия – в 67,02% (n=63), слабость, чувства недомогания – в 97,82% (n=92) случаев. Из проявлений острого ринита на заложенность носа жаловались 84 человека (89,36%), ринорея отмечалась в 92,55% (n=87), чихание в 87,23% (n=82) случаев. Боль при глотании, першение, сухость задней стенки глотки встречались у 88,3% (n=83), мучительный сухой кашель – у 64% (n=60) человек.

При оценке системного иммунного статуса выявлено, что у большинства больных при обращении в первые 2 дня заболевания не было отклонений в лабораторных показателях от общепринятых норм, за исключением снижения относительного числа цитотоксических Т-лимфоцитов (CD3+CD8+), стимулированного НСТ-теста или теста с нитросиним тетразолием, определяющего фагоцитарную активность гранулоцитов, и увеличения фагоцитарной активности моноцитов (табл. 1). Это подтверждает результаты других исследований о незначительной амплитуде отклонений от нормы параметров системного гуморального и клеточного иммунитета при большинстве острых воспалительных заболеваний ЛОР-органов, особенно в тех случаях, когда патологический процесс не выходит за пределы слизистых оболочек [11].

60-1.jpg (306 KB)

Считается, что наиболее информативным в этом случае является изучение показателей локального иммунного статуса. Поскольку исследование цитокинов в выделениях из носа рекомендовано при различных формах ринита и острых респираторных инфекциях [12], нами был проведен анализ содержания провоспалительных цитокинов ИЛ-1b, ИЛ-6, ИЛ-8 и главных факторов врожденного иммунитета – ИФН-α и sIgА – в носовой слизи среднего носового хода. Для стандартизации пирогаллоловым методом определяли количество общего белка в образцах назальной слизи, затем пересчитывали содержание цитокинов на концентрацию белка 1 мг/мл. В начале инфекционного процесса в носовой слизи пациентов с ОНФ, по сравнению с группой здоровых добровольцев, было обнаружено низкое количество ИФН-α и sIgА и повышенное количество всех исследуемых нами провоспалительных цитокинов (табл. 2).

61-1.jpg (126 KB)

61-2.jpg (94 KB)При изучении аналогичного спектра провоспалительных цитокинов и ИФН-α в сыворотке крови все показатели были в пределах общепринятых нормативных значений, кроме провоспалительного цитокина ИЛ-1b, который был повышен (табл. 3). Это логично объясняется наличием интоксикационного синдрома с повышением температуры тела выше 37,1 °C у всех пациентов, включенных в исследование. Полученные данные еще раз подтверждают общепринятое мнение, что исследование цитокинов сыворотки крови при воспалительной патологии слизистой верхних дыхательных путей не имеет большого значения. Поскольку основу патологического процесса составляет местное воспаление слизистой оболочки, диагностическую ценность имеют цитокины непосредственно из очага поражения.

ОБСУЖДЕНИЕ

Устойчивость организма человека к различным респираторным инфекционным агентам – многофакторный феномен. Факторы врожденного и приобретенного иммунитета тесным образом взаимосвязаны и дополняют друг друга, в конечном итоге представляя собой лишь отдельные звенья защитного механизма, каким является противоинфекционный иммунитет. Иммунные механизмы не только обусловливают общую резистентность организма к инфекциям, но и в существенной мере определяют местную тканевую защиту на уровне слизистых оболочек. К факторам первой линии защиты слизистых оболочек относятся постоянное движение ресничек цилиндрического эпителия, лектины С-типа (конаглютинин, маннозосвязывающий белок, белки А и D сурфактанта), лизоцим, sІgА, ИФН и многие другие вещества, которые содержатся в секрете дыхательных путей. Их действие продолжается на протяжении всего периода борьбы с инфекцией, но наиболее эффективно они работают в течение первых 4 ч после внедрения вируса, когда они выступают практически единственными защитниками организма [13, 14].

Иммунная система организма всегда реагирует на внедрение микроорганизмов местной воспалительной реакцией, а при ее неэффективности – развитием системного острофазового ответа. ИФН-α формирует защитный барьер на пути вирусов намного раньше специфических защитных реакций иммунитета, стимулируя клеточную резистентность и делая клетки непригодными для размножения вирусов [15]. От скорости включения системы ИФН в процесс противовирусной защиты зависят течение и исход заболевания [16].

В нашем исследовании в начальной стадии острого респираторного заболевания показатели гуморального и клеточного иммунитета в подавляющем случае определялись в пределах нормы, было выявлено снижение показателей местного иммунного ответа в виде уменьшения содержания ИФН-α и sIgА. Повышение провоспалительных цитокинов ИЛ-1b, ИЛ-6, ИЛ-8 в назальной слизи и ИЛ-1b в сыворотке крови служит, наряду с клинической картиной, дополнительным свидетельством воспалительного процесса у этих пациентов. По мере развития воспалительного процесса все показатели будут иметь динамические изменения в зависимости от способа лечения [17].

Поскольку у зарегистрированных в настоящее время на территории России лекарственных иммунотропных препаратов системного применения нет доказанного влияния на факторы локального иммунитета слизистой оболочки верхних дыхательных путей, а изменения показателей системного клеточного и гуморального иммунитета, которые бы свидетельствовали о вторичном иммунодефиците, не определяются, вопрос об эффективности этих препаратов при их включении в схемы медикаментозной терапии острых респираторных вирусных заболеваний требует дальнейшего изучения.

ЗАКЛЮЧЕНИЕ

1. При ОНФ на фоне ОРВИ в периферической крови в начальном периоде заболевания определяется снижение относительного числа цитотоксических Т-лимфоцитов (CD3+CD8+), стимулированного НСТ-теста и увеличение фагоцитарной активности моноцитов.

2. Изучение показателей локального иммунного статуса выявило снижение основных факторов врожденного иммунитета слизистой оболочки ИФН-α и sIgА в носовой слизи.

3. Изучение возможности влияния на факторы врожденного иммунного ответа слизистой оболочки верхних дыхательных путей может быть перспективным для снижения восприимчивости организма к респираторным вирусам.

References

  1. Салтыкова Т.С., Жигарловский Б.А., Иваненко А.В. с соавт. Эпидемиологическая характеристика острых респираторных вирусных инфекций и гриппа на территории Российской Федерации и г. Москвы. Журнал инфектологии. 2019; 2: 124–132. [Saltykova T.S., Zhigarlovsky B.A., Ivanenko A.V. et al. Epidemiological characteristics of acute respiratory viral infection and influenza in Russian Federation and Moscow. Zhurnal infektologii = Journal of Infectology. 2019; 2: 124–132 (In Russ.)]. doi: https://doi.org/10.22625/2072-6732-2019-11-2-124-132.
  2. Козлов И.Г. Критический взгляд на рынок иммуномодуляторов в России. Российский вестник перинатологии и педиатрии. 2009; 4: 94–100. [Kozlov I.G. A critical view of the market of immunomodulators in Russia. Rossiyskiy vestnik perinatologii i pediatrii = Russian Bulletin of Perinatology and Pediatrics. 2009; 4: 94–100 (In Russ.).].
  3. Савлевич Е.Л., Козлов В.С., Анготоева И.Б. Современные представления о роли нёбных миндалин в системе иммунитета и анализ применения иммунотропных препаратов при хроническом тонзиллите. Российская оториноларингология. 2018; 6: 48–55. [Savlevich E.L., Kozlov V.S., Angotoeva I.B. The present-day views of the role of palatine tonsils in the immune system and analysis of application of immunotropic drugs in chronic tonsillitis. Rossiyskaya otorinolaringologiya = Russian otorhinolaryngology. 2018; 6: 48–55 (In Russ.)]. doi: https://doi.org/10.18692/1810-4800-2018-6-48-55.
  4. Савлевич Е.Л., Курбачева О.М., Шачнев К.Н. Целесообразность применения иммунотропных препаратов в лечении хронического полипозного риносинусита. Российская ринология. 2018; 3: 41–46. [Savlevich E.L., Kurbacheva O.M., Shachnev K.N. The expediency of the application of the immunomodulatory medications for the treatment of chronic rhinosinusitis with nasal polyps. Rossiyskaya rinologiya = Russian rhinology. 2018; 3: 41–46 (In Russ.)]. doi: https://doi.org/10.17116/rosrino20182603141.
  5. Арефьева Н.А., Азнабаева Л.Ф. Особенности иммунотропной терапии при воспалении верхних дыхательных путей: результаты 30-летних исследований. Вестник оториноларингологии. 2012; 6: 30–32. [Arefieva N.A., Aznabaeva L.F. Peculiarities of immunotherapy of inflammation of the upper respiratory tract: the results of 30-year investigations. Vestnik otorinolaringologii = Bulletin of Otorhinolaryngology. 2012; 6: 30–32 (In Russ.)].
  6. Булгакова В.А. К вопросу применения иммуномодуляторов в лечении и профилактике респираторных вирусных инфекций у детей. Медицинский совет. 2016; 17: 56–61. [Bulgakova V.A. On issue of immune modulators application in therapy and prevention of respiratory viral infections in children. Meditsinskiy sovet = Medical Council. 2016; 17: 56–61 (In Russ.)]. doi: https://doi.org/10.21518/2079-701X-2016-17-56-61.
  7. Исаков В.А., Исаков Д.В. Иммуномодуляторы в терапии респираторных инфекций. Антибиотики и химиотерапия. 2014; 11–12: 27–34. [Isakov V.A., Isakov D.V. Immunomodulators in therapy of respiratory infections. Antibiotiki i khimioterapiya = Antibiotics and Chemotherapy. 2014; 11–12: 27–34 (In Russ.)].
  8. Савлевич E.Л., Горбунов С.А., Фельшин Д.И. с соавт. Анализ схем диагностики и лечения острых воспалительных заболеваний верхних дыхательных путей по данным поликлиник Управления делами Президента РФ. Педиатрия. Журнал им. Г.Н. Сперанского. 2021; 1: 136–144. [Savlevich1 E.L., Gorbunov S.A., Felshin D.I. et al. Analysis of diagnosis and treatment approaches for acute inflammatory diseases of the upper respiratory tract according polyclinics data of the outpatient service of the presidential administration of the Russian Federation. Pediatriya. Zhurnal imeni G.N. Speranskogo = Pediatrics. Journal named after G.N. Speransky. 2021; 1: 136–144 (In Russ.)]. doi: https://doi.org/10.24110/0031-403X-2021-100-1-136-144.
  9. Петров Р.В., Лопухин Ю.М., Чередеев А.Н. Оценка иммунного статуса человека: методические рекомендации. М.: Минздрав СССР. 1984; 36 с. [Petrov R.V., Lopukhin Yu.M., Cheredeev A.N. Assessment of the human immune status: guidelines. Moscow: Minzdrav SSSR = Ministry of Healthcare of the USSR. 1984; 36 p. (In Russ.)].
  10. Кудревич Ю.В., Кузнецова Е.К., Щипачева О.В. с соавт. Влияние гидролизата плаценты на нейтрофильное звено системного иммунитета при косметологических процедурах. Российский иммунологический журнал. 2020; 3: 353–358. [Kudrevich Yu.V., Kuznetsova E.K., Shchipacheva O.V. et al. Human placenta hydrolyzate affects neutrophils of systemic immunity during cosmetic procedures. Rossiyskiy immunologicheskiy zhurnal = Russian Journal of Immunology. 2020; 3: 353–358 (In Russ.)]. doi: https://doi.org/10.46235/1028-7221-325-HPH.
  11. Никулин Б.А. Оценка и коррекция иммунного статуса. М.: ГЭОТАР-Медиа. 2007; 376 с. [Nikulin B.A. Assessment and correction of the immune status M.: GEOTAR-Media. 2007; 376 p. (In Russ.)]. ISBN: 978-5-9704-0741-7.
  12. Winther B. Rhinovirus infections in the upper airway. Proc Am Thorac Soc. 2011; 8(1): 79–89. doi: 10.1513/pats.201006-039RN.
  13. Рязанцев С.В., Хмельницкая Н.М., Тырнова Е.В. Роль слизистой оболочки в защите ЛОР-органов от потенциально патогенных для организма антигенных факторов. Вестник оториноларингологии. 2000; 3: 60–64. [Ryazantsev S.V., Khmelnitskaya N.M., Tyrnova E.V. The role of mucous membrane in ENT defense from potentially pathogenic antigenic factors. Vestnik otorinolaringologii = Otorhinolaryngology Bulletin. 2000; 3: 60–64 (In Russ.)].
  14. Ooi E.H., Wormald P.J., Tan L.W. Innate immunity in the paranasal sinuses: a review of nasal host defenses. Am J Rhinol. 2008; 22(1): 13–19. doi: 10.2500/ajr.2008.22.3127.
  15. Jung H.E., Lee H.K. Host Protective immune responses against influenza A virus infection. Viruses. 2020; 12(5): 504. doi: 10.3390/v12050504.
  16. Major J., Crotta S., Llorian M. et al. Type I and III interferons disrupt lung epithelial repair during recovery from viral infection. Science. 2020; 369(6504): 712–17. doi: 10.1126/science.abc2061.
  17. Савлевич Е.Л., Бродовская О.Б., Ремизова И.И. с соавт. Клинико-иммунологическая эффективность применение новой аэрозольной формы рекомбинантного интерферона-α2b в лечении больных с острыми назофарингитами. Цитокины и воспаление. 2010; 1: 49–56. [Savlevich E.L., Brodovskaya O.B., Remizova I.I. et al. Clinical and immunological aspects of application of the new aerosol form of recombinant interferon α2b in the treatment of patients with acute nasopharyngitis. Tsitokiny i vospalenie = Cytokines and Inflammation. 2010; 1: 49–56 (In Russ.)].

About the Authors

Elena L. Savlevich, PhD, associate professor of the Department of otorhinolaryngology, Central State Medical Academy of Department for Presidential Affairs of Russian Federation. Address: 121359, Moscow, 19/1a Marshala Timoshenko Str. Tel.: +7 (985) 145-27-45. E-mail: savllena@gmail.com. ORCID: 0000-0003-4031-308X
Andrey S. Simbirtsev, MD, professor, corresponding member of the Russian Academy of Sciences, Deputy Director for science of State Research Institute of Highly Pure biopreparations of FMBA. Address: 197110, Saint Petersburg, 7 Pudozhskaya Str. Tel.: +7 (921) 918-12-17. E-mail: a.s.simbirtsev@hbp.spb.ru. ORCID: 0000-0002-8228-4240
Guzel N. Chistyakova, MD, professor, head of the Department of immunology, clinical microbiology, pathomorphology and cytodiagnostics, Ural Scientific Research Institute for Maternal and Child Care. Address: 620028, Yekaterinburg, 1 Repina Str. 1. Tel.: +7 (922) 602-86-20. E-mail: chistyakovagn@niiomm.ru. ORCID: 0000-0002-0852-6766
Katerina G. Terekhina, clinical resident of the Department of otorhinolaryngology, Central State Medical Academy of Department for Presidential Affairs of Russian Federation. Address: 121359, Moscow, 19/1a Marshala Timoshenko Str. Tel.: +7 (985) 912-97-57. E-mail: Katerina.g.terekhina@gmail.com. ORCID: 0000-0003-3313-9984
Natalia A. Batskalevich, PhD, Deputy Chief physician for infectious diseases of City Clinical Hospital No. 40. Address: 620102, Yekaterinburg, 189 Volgogradskaya Str. Tel: +7 (922) 117-07-40. E-mail: nabat66@mail.ru. ORCID: 0000-0001-7594-0994

Similar Articles

By continuing to use our site, you consent to the processing of cookies that ensure the proper functioning of the site.