ISSN 2412-4036 (print)
ISSN 2713-1823 (online)

Acute kidney injury and macrophages of the heart-kidney axis in patients with fatal myocardial infarction

Kercheva M.A., Ryabov V.V., Gombozhapova A.E., Stepanov I.V.

1) Siberian State Medical University of the Ministry of Healthcare of Russia, Tomsk; 2) Research institute of Cardiology of Tomsk National Research Medical Center of the Russian Academy of Sciences; 3) National Research Tomsk State University
Abstract. Experiments have shown that innate immune cells are involved in the development of acute kidney injury (AKI) during myocardial ischemia. However, it is not clear how the development of AKI affects the changes in the macrophage composition of the kidneys and myocardium and, ultimately, the processes of cardiorenal correlations and subsequent regeneration of the heart muscle in patients with myocardial infarction (MI). The aim of the study is to evaluate the peculiarities of macrophage composition of kidneys and myocardium tissues, their relationship with the development of an unfavorable outcome of the disease in patients with fatal MI and AKI presence. Material and methods. We analyzed histological sections of the kidneys and myocardium (from the infarct zone) obtained at autopsy in patients (n=28) who died from type I MI (age 74,8±9,3 years). The macrophage composition of the kidneys and myocardium was assessed by means of immunohistochemical studies using antibodies (CD68, CD163, CD206, stabilin-1). Depending on the presence of AKI, patients were divided into two groups: group 1 – AKI+ (n=10); and 2nd – AKI- (n=18). Results. The main disease of the majority of patients included in the study is MI with ST-segment elevation, the cause of death is cardiogenic shock. Among all the cells of the macrophage series studied by us, the predominance of CD163+ cells was revealed both in the kidneys and in the myocardium. In the kidneys, the number of these cells was 30 (8; 108) in the total sample, 25 (8; 53) in the AKI- group, 30 (13; 108) in the AKI+ group; in the myocardium, similar indicators were 500 (21; 1729), 484 (21; 1729) and 598 (26; 1504) cells, respectively. The groups differed from each other only by the number of CD206+ cells in the kidneys: 2 (2; 3) in AKI+ versus 5 (2; 6) in AKI- (p=0.0004). Correlations were found between the time of death (r=-0,7, p <0,05), as well as between the number of CD206+ cells in the kidneys (r=-0,5, p <0,05) and the presence of AKI. Conclusion. The macrophage composition of kidney and myocardial tissue in patients with fatal MI, regardless of the degree of kidney damage, was characterized by the predominance of CD163+ cells. AKI in individuals with fatal MI was associated with lower levels of CD206+ cells in the kidneys and a faster onset of death.

Keywords

myocardial infarction
macrophages
inflammation
acute kidney injury

ВВЕДЕНИЕ

Известно, что развитие острого почечного повреждения (ОПП) у пациентов с инфарктом миокарда (ИМ) ухудшает прогноз и течение заболевания, увеличивает риск возникновения летального исхода в десятки раз [1–3]. Примечательно, что это осложнение развивается не у каждого пациента с ИМ, а лишь в 20% случаев [4] и происходит в условиях реализации всех существующих стратегий нефропротекции [5]. В настоящее время нам известен целый ряд гемодинамических и нейрогуморальных механизмов, которые потенциально могут быть вовлечены во взаимодействие между сердцем и почками [2, 4]. При этом успехи применения противовоспалительной терапии у лиц с высокими сердечно-сосудистыми рисками, в том числе у пациентов с наличием хронической ишемической болезни сердца и высоким уровнем С-реактивного белка [6], позволяют предположить, что изучение динамики и взаимодействия клеток, участвующих в процессах регенерации и воспаления и лежащих в основе реализации иммунологических механизмов, также является новым перспективным направлением.

Ряд экспериментальных данных указывает на активное участие клеток врожденного иммунитета в кардиоренальных взаимоотношениях при ИМ [7, 8]. Непрерывная симпатическая стимуляция клеток собирательных канальцев почек в условиях ишемии способствует тому, что макрофаги (МФ) почек выделяют в кровоток ряд молекул, включая гранулоцитарно-макрофагальный колониестимулирующий фактор (GM-CSF), способных индуцировать поляризацию в сердце воспалительных МФ М1 типа в противовоспалительные МФ М2 типа [8]. Данная активация паракринного пути передачи сигналов ведет к развитию адаптивной гипертрофии миокарда и фиброзу сердца [9]. Нами уже получен ряд данных об особенностях макрофагального состава ткани почек и миокарда, их взаимодействиях между собой и влиянии на прогноз у пациентов с фатальным исходом ИМ [10–12]. Однако, каким именно образом развитие ОПП влияет на изменение макрофагального состава миокарда и почек и, возможно, на течение и прогноз заболевания у лиц с фатальным исходом ИМ, не известно. Существует высокая доля вероятности того, что одним из возможных механизмов развития ОПП у лиц с ИМ служит определенное взаимодействие между клетками врожденного иммунитета. Интерес вызывает и определение конкретных фенотипов клеток макрофагального ряда почек и сердца, на изменение которых влияет как наличие острого ишемического повреждения тканей миокарда, так и формирование ОПП. Углубленное изучение функции и динамики этих типов клеток, их взаимосвязей между собой и с клиническими данными, вероятно, сможет в будущем повлиять на прогноз и исход ИМ путем таргетного воздействия на эти клеточные субпопуляции.

Цель нашего исследования − оценка особенностей макрофагального состава почек и ее взаимосвязи с развитием неблагоприятного исхода у пациентов с фатальным ИМ в зависимости от наличия ОПП.

МАТЕРИАЛ И МЕТОДЫ

Материалом для нашей работы послужили фрагменты почек и миокарда (зона инфаркта) пациентов (n=28), умерших от ИМ 1 типа.

Критериями исключения являлись ИМ II–V типа, онкологические заболевания, инфекционные осложнения (сепсис, пневмония), клапанные пороки, требующие хирургического вмешательства.

Средний срок наступления летального исхода составлял 2 сут (1; 30). Исследование было одобрено Комитетом по биомедицинской этике НИИ кардио­логии Томского НИМЦ (протокол № 128) и проводилось в соответствии с принципами Хельсинкской декларации. Патологоанатомическое вскрытие осуществлялось согласно приказу Минздрава России от 06.06.2013 № 354н. Подписание информированного согласия пациентов не осуществлялось, что не противоречило правилам проведения исследования согласно Хельсинкской декларации («информированное согласие», п. 32).

Аутопсия проводилась в течение 24 ч после наступления факта смерти. Забранный материал фиксировали в течение суток в 10% забуференном формалине, после чего выполняли стандартную гистологическую проводку и заливку в парафин в аппарате Thermo Scientific Excelsior ES (США). Затем из парафиновых блоков с помощью ротационного микротома Thermo Scientific HM355S (США) были выполнены микротомные срезы почки и сердца. С каждого блока было сделано по 10 срезов для фрагментов почки и по 20 срезов для фрагментов миокарда, после чего материал был нанесен на стекла с L-полилизиновым покрытием, по два среза на одно стекло.

Макрофагальную инфильтрацию почек и миокарда оценивали два независимых эксперта с помощью иммуногистохимического исследования, проводимого на автоматическом иммуностейнере Leica Bond-Max (Германия). Для иммунофенотипирования МФ использовались мышиные моноклональные антитела к общему маркеру МФ CD68 (Cell Marque, разведение 1:500), антитела к маркеру М2 МФ CD163 (Cell Marque, разведение 1:50) и CD206 (Santa Cruz, разведение 1:100), а также дополнительные антитела к маркеру М2 МФ, синтезированные в лаборатории врожденного иммунитета и иммунологической толерантности (Университет Гейдельберга) к стабилину-1 (разведение 1:1000).

В целях визуализации исследованных маркеров применялся набор реагентов для детекции Bond на основе Полимера – Bond Polymer Refine Detection (Великобритания). Иммуногистохимическое окрашивание проводилось по стандартному протоколу [12]. Подсчет клеток в почках и миокарде производился в 10 случайных полях зрения (объектив 40×) на микроскопе Axio Imager M2, Carl Zeiss (Германия), в светлом поле.

Далее пациентов разделили на 2 группы в соответствии с наличием у них ОПП: 1-я группа − ОПП+ (n=10); 2-я группа − ОПП- (n=18). ОПП определяли согласно существующим в клинической практике критериям патоморфологического исследования почек [13]. Критериями морфологического подтверждения ОПП служили наличие истончения тубулярного эпителия преимущественно проксимальных почечных канальцев с утратой щеточной каемки, потеря структурности апикального контура цитоплазмы с усилением ее эозинофильного окрашивания, появление в ядрах эпителиоцитов конденсированного хроматина, повышение базофилии ядер с их пикнозом, кариолизис. При этом просветы канальцев были заполнены десквамированными некротизированными эпителиальными клетками канальцев, массами фибрина и гиалиновыми цилиндрами. Описанные изменения эпителия, прежде всего проксимальных почечных канальцев, интерпретировались как проявления тубулонекроза, являющегося основным морфологическим признаком ОПП.

В таблице 1 представлены клинико-анамнестические данные больных, включенных в исследование. Стоит отметить, что по клинико-анамнестическим данным исследуемые группы были сопоставимы; отличия были обнаружены только между уровнем креатинина при поступлении в стационар.

47-1.jpg (447 KB)

Для статистической обработки полученных данных использовалось программное обеспечение STATISTICA 12.0. Нормальность количественных данных проверялась по критерию Шапиро–Уилка. Возраст пациентов и уровень креатинина, скорость клубочковой фильтрации при поступлении в стационар описывались средним значением (М) и стандартным отклонением (SD), остальные количественные показатели, не имевшие нормального распределения, – медианой (Ме) и интерквартильным интервалом (Q1; Q3). Категориальные показатели описывались частотами и процентами. Для сравнения количественных показателей в независимых группах применялся критерий Манна–Уитни, для сравнения категориальных признаков – критерий Пирсона (χ2) и точный критерий Фишера. Множественное сравнение между количеством клеток в группах выполнялось с помощью критерия Краскела–Уоллиса. Корреляционные связи между количеством клеток и клинико-анамнестическими данными выявлялись посредством коэффициента корреляции Спирмена. Значение r (коэффициент ранговой корреляции) от 0,4 до 0,7 показало умеренную корреляцию. Проверка статистических гипотез проводилась по уровню значимости р=0,05.

РЕЗУЛЬТАТЫ

По данным иммуногистохимического исследования нами было обнаружено, что как в общей выборке, так и у лиц из групп ОПП- и ОПП+ среди всех исследуемых клеток в почках преобладают CD163+ клетки (рис. 1, табл. 2).

48-1.jpg (332 KB)

Особенности макрофагальной инфильтрации почек в зависимости от наличия ОПП у пациентов в анамнезе отражены в таблице 2.

Исходя из полученных данных, очевидно, что исследуемый нами макрофагальный состав почек у пациентов с развившимся ОПП аналогичен таковому у пациентов без ОПП, за исключением количества CD206+ клеток.

Нами обнаружено, что в общей выборке, а также у лиц из групп ОПП- и ОПП+ среди всех исследуемых клеток в миокарде преобладают CD163+ и CD68+ клетки (рис. 2).

Межгрупповых отличий по количеству клеток в миокарде нами выявлено не было (табл. 3).

После этого мы оценили наличие корреляций между развитием ОПП у пациентов с ИМ и клинико-анамнестическими данными, а также изменениями макрофагального состава миокарда. Были установлены обратные корреляции между сроком наступления летального исхода и наличием ОПП (r=-0,7; p <0,5), а также между количеством CD206+ клеток в почках и наличием ОПП (r=-0,5; p <0,05). Корреляции между количеством клеток в миокарде и в почках отображены на рисунке 3.

49-1.jpg (75 KB)

ОБСУЖДЕНИЕ

Актуальность и перспективность изучения места системы врожденного иммунитета в формировании кардиоренальных взаимоотношений, их влияния на течение и прогноз ИМ обусловлена, помимо многообещающих экспериментальных данных [1, 8, 10], наличием определенных клинических успехов в области применения противовоспалительных препаратов у пациентов с высоким сердечно-сосудистым риском [6, 14].

При изучении особенностей макрофагального состава почек и миокарда у лиц с фатальным ИМ нами была выявлена их гетерогенность, присутствовали все типы исследуемых нами клеток. Похожие данные были получены ранее как при анализе макрофагального состава миокарда в условиях ИМ [15], так и биоптатов почек, у лиц с патологией почек воспалительного [16] и аутоиммунного генеза [17]. Среди всех изученных клеток в нашей выборке отмечено преобладание CD163+ и CD68+ клеток как в почках, так и в миокарде, у всех пациентов, независимо от наличия ОПП. Известно, что данный тип клеток характеризуется повышенной экспрессией в условиях острого и хронического воспалительного процесса [18]. Вероятно, высокая концентрация CD163+ клеток у лиц с ИМ также отражает наличие активного воспалительного фона, поддержание которого способствует развитию и прогрессированию как почечной, так и сердечной недостаточности, и ассоциировано с неблагоприятным исходом. Стоит отметить, что исследователи ранее также обнаруживали высокое содержание CD163+ клеток в биоптатах почек у пациентов с волчаночным нефритом [17], ассоциированное с неблагоприятным течением и прогнозом заболевания; подобные данные были характерны и для больных с IgA-нефропатией [19], и для пациентов после трансплантации почки [20]. Высокое содержание клеток этого типа в миокарде в отдаленный постинфарктный период также было связано с неблагоприятным исходом [15]. Открытым остается вопрос, являются ли CD163+ клетки в тканях представителями резидентного пула клеток, присутствующих в тканях с момента эмбриогенеза и участвующих в поддержании гомео­стаза, либо же повышение концентрации CD163+ клеток обусловлено привлечением этого типа клеток в очаг повреждения?

Отталкиваясь от наших данных, можно предположить, что пул CD163+ клеток преимущественно является резидентным. В пользу такой гипотезы свидетельствует отсутствие различий по количеству данных клеток между группами ОПП+ и ОПП-. Однако тот факт, что содержание CD163+ и CD68+ клеток в зоне инфаркта миокарда в десятки раз превышает их содержание в почках при ИМ, и более чем в сотни раз, в биоптатах почек у здоровых лиц [19], указывает на активную вовлеченность клеток этого типа в процессы постинфарктной регенерации миокарда и существование пришлого пула данного типа клеток, рекрутированных в очаг некроза миокарда. Однако наиболее вероятным нам представляется участие этого типа клеток в поддержании гомеостаза тканей, иммунологической регуляции и регенерации тканей при повреждении, что и объясняет их высокую концентрацию в тканях [21].

Помимо CD163+ клеток, в исследовании выявлено преобладание в почках и миокарде CD68+ клеток. СD68 – иммуногистохимический маркер обшей популяции МФ, реализующих свою основную функцию, которая заключается в поглощении апоптотических и поврежденных клеток [22]; вероятно, этим обусловлено их высокое содержание и в почках, и в миокарде у лиц с ИМ. Высокая концентрация клеток этого типа может свидетельствовать об их участии в пролонгированной воспалительной реакции, указывать на вовлеченность системы врожденного иммунитета в процессы постинфарктной регенерации как миокарда, так и почек и быть ассоциированной с неблагоприятным прогнозом. Для того чтобы понять конкретную причину высокой концентрации CD163+ и CD68+ клеток, необходимо провести сравнение между содержанием этих клеток у лиц с ИМ и здоровых лиц, что служит объектом нашего дальнейшего исследования. Известно, что в ряде исследований содержание CD68+ клеток коррелировало с наличием протеинурии и с неблагоприятным исходом [23]. Количество же данных клеток в нашей группе было сопоставимым с количеством CD68+ клеток в почках у лиц со сниженной скоростью клубочковой фильтрации и наличием волчаночного нефрита [24].

Наряду с вышеперечисленными клетками нами были изучены CD206+ клетки, относящиеся к МФ М2 типа. Количество клеток этого типа у лиц из группы ОПП+ было значимо меньшим, чем в группе ОПП-: вероятно, это отражение того факта, что истощение CD206+ клеток может быть ассоциировано как с прогрессированием и/или развитием кардиоренального синдрома, так и с течением самого заболевания. Ранее в исследованиях были получены результаты, отчасти сопоставимые с нашими: так, Li J. et al. (2015) при сравнении количества клеток в биоптате почек у лиц с острым интерстициальным нефритом и у когорты лиц с острым тубулярным некрозом обнаружили, что во втором случае количество CD206+ клеток было меньшим [19]. Тем не менее другие выводы этого исследования противоречат нашим и говорят о высоком содержании СD206+ клеток в зоне ишемии. Наличие взаимосвязи между низким уровнем CD68+ и CD163+ клеток и высоким уровнем CD206+ клеток у лиц без ОПП может свидетельствовать о присутствии взаимодействий между макрофагами оси «сердце–почка» у человека, схожих с теми, которые были обнаружены в экспериментах на грызунах в условиях моделирования ишемии миокарда [8, 9]. Известно, что изменение макрофагальной инфильтрации почек в условиях ишемии, обусловленное истощением резидентных МФ почек М2 типа и рекрутированием МФ с провоспалительным фенотипом в ткани почки, способствует изменению макрофагальной инфильтрации миокарда с поляризацией МФ миокарда в клетки с М2 фенотипом, и наоборот. Вероятно, больший резерв МФ М2 типа может быть необходим для изменения поляризации МФ сердца в ранний период ИМ, что, в свою очередь, может влиять на активность воспалительного ответа в ранний постинфарктный период и быть связанным с развитием смертельных осложнений и наступлением более раннего летального исхода. Количество клеток данного типа в нашей выборке было в 2 раза ниже, чем у лиц с тубулярным некрозом, [20]. Это может свидетельствовать об их активной вовлеченности в межорганные взаимоотношения «сердце–почка» в условиях ишемии.

Кроме того, мы оценивали содержание в почках и миокарде стабилин-1+ клеток, их содержание между группами не отличалось. Интересным представляется изменение соотношения между стабилин-1+ и CD206+ клетками в миокарде в зависимости от наличия ОПП. Несмотря на то что эти клетки относятся к МФ М2 типа [25], их соотношение изменяется. Это может указывать на их разные функции и роль в процессах воспаления и регенерации; возможно, у таких клеток существует определенная тканевая специфичность. Интересно и то, что содержание этого типа клеток в миокарде в сотни раз больше, чем в почке, что, по-видимому, говорит об их минимальной вовлеченности в процессы кардиоренальных взаимоотношений.

Полученные нами данные об особенностях состава макрофагального инфильтрата почек и миокарда у лиц с ИМ в зависимости от наличия ОПП, а также о взаимосвязях между клетками макрофагального ряда миокарда и почек, служат предпосылкой для более глубокого изучения на большей выборке пациентов с ИМ роли и места конкретных клеток макрофагального ряда в неблагоприятном течении кардиоренальных взаимодействий и таргетного влияния на эти клеточные субпопуляции. Для дальнейшего вывода о том, является ли повышенное содержание CD163+ и CD68+ клеток в почках и миокарде проявлением системной воспалительной реакции, характерной для любого течения ИМ, либо же этот процесс служит проявлением неблагоприятного течения ИМ, а также для оценки снижения концентрации CD206+ клеток в почках в качестве возможного предиктора неблагоприятного течения и прогноза ИМ необходимо сопоставление полученных нами данных с результатами исследования тканей, полученных от здоровых лиц.

Ограничение исследования: наше исследование являлось одноцентровым, было проведено на небольшой выборке, что связано с ограниченным количеством времени сбора материала и строгими критериями включения. По этим причинам необходимы дальнейшие исследования.

ЗАКЛЮЧЕНИЕ

Макрофагальный состав почек и миокарда у пациентов с фатальным ИМ, независимо от степени повреждения почек, характеризовался преобладанием CD163+ клеток. ОПП у лиц с фатальным ИМ было ассоциировано с меньшим уровнем CD206+ клеток в почках и скорым наступлением летального исхода.

References

1. Wang C., Pei Y.Y., Ma Y.H. et al. Risk factors for acute kidney injury in patients with acute myocardial infarction. Chin Med J (Engl). 2019; 132(14): 1660–65. https://dx.doi.org/10.1097/ CM9.0000000000000293.

2. Межонов Е. М., Вялкина Ю.А., Шалаев С.В. Прогностическое значение острого кардиоренального синдрома у пациентов с острой кардиальной патологией. Кардиология. 2019; 59(8S): 44–55. [Mezhonov E.M., Vyalkina Yu.A., Shalaev S.V. Prognostic value of acute cardiorenal syndrome in patients with acute cardiac pathology. Kardiologiya = Cardiology. 2019; 59(8S): 44–55 (In Russ.)]. https://dx.doi.org/10.18087/cardio.2678. EDN: JIUMER.

3. Рябова Т.Р., Рябов В.В., Соколов А.А. с соавт. Динамика структурно-геометрических и функциональных показателей левого желудочка в ранние и поздние сроки инфаркта миокарда. Ультразвуковая и функциональная диагностика. 2001; 3: 54–60. [Ryabova T.R., Ryabov V.V., Sokolov A.A. Dynamics of structural-geometric and functional parameters of the left ventricle in the early and late stages of myocardial infarction. Ul’trazvukovaya i funktsional’naya diagnostika = Ultrasonic and Functional Diagnostics. 2001; 3:54-60 (In Russ.)]. EDN: VWTHHX.

4. Kofman N., Margolis G., Gal-Oz A. et al. Long-term renal outcomes and mortality following renal injury among myocardial infarction patients treated by primary percutaneous intervention. Coron Artery Dis. 2019; 30(2): 87–92.https://dx.doi.org/10.1097/MCA.0000000000000678.

5. Gameiro J., Fonseca J.A., Outerelo C., Lopes J.A. Acute kidney injury: From diagnosis to prevention and treatment strategies. J Clin Med. 2020; 9(6): 1704. https://dx.doi.org/10.3390/jcm9061704.

6. Ridker P.M., Devalaraja M., Baeres F.M.M. et al. IL-6 inhibition with ziltivekimab in patients at high atherosclerotic risk (RESCUE): A double-blind, randomised, placebo-controlled, phase 2 trial. Lancet. 2021; 397(10289): 2060–69.https://dx.doi.org/10.1016/S0140-6736(21)00520-1.

7. Cantero-Navarro E., Rayego-Mateos S., Orejudo M. et al. Role of macrophages and related cytokines in kidney disease. Front Med (Lausanne). 2021; 8: 688060. https://dx.doi.org/10.3389/fmed.2021.688060

8. Fujiu K., Shibata M., Nakayama Y. et al. A heart-brain-kidney network controls adaptation to cardiac stress through tissue macrophage activation. Nat Med. 2017; 23(5): 611–22. https://dx.doi.org/10.1038/nm.4326.

9. Silljу H., de Boer R. Heart failure: Macrophages take center stage in the heart-brain kidney axis. Nat Rev Nephrol. 2017; 13(7): 388–90. https://dx.doi.org/10.1038/nrneph.2017.73.

10. Kercheva M., Ryabov V., Gombozhapova A. et al. Macrophages of the «heart-kidney» axis: Their dynamics and correlations with clinical data and outcomes in patients with myocardial infarction. J Pers Med. 2022; 12(2): 127. https://dx.doi.org/10.3390/jpm12020127.

11. Керчева М.А., Рябов В.В. Роль макрофагов в формировании кардиоренального синдрома при инфаркте миокарда. Российский кардиологический журнал. 2021; 26(4): 143–148. [Kercheva M., Ryabov V. Role of macrophages in cardiorenal syndrome development in patients with myocardial infarction. Rossiyskiy kardiologicheskiy zhurnal = Russian Journal of Cardiology. 2021; 26(4): 143–148 (In Russ.)]. https://dx.doi.org/10.15829/1560-4071-2021-4309. EDN: KMBDDD.

12. Ryabov V., Gombozhapova A., Rogovskaya Y. et al. Cardiac CD68+ and stabilin-1+ macrophages in wound healing following myocardial infarction: From experiment to clinic. Immunobiology. 2018; 223(4–5): 413–21. https://dx.doi.org/10.1016/j.imbio.2017.11.006.

13. Gaut J.P., Liapis H. Acute kidney injury pathology and pathophysiology: a retrospective review. Clin Kidney J. 2021; 14(2): 526–36. https://dx.doi.org/10.1093/ckj/sfaa142.

14. Baylis R., Gomez D., Mallat Z. et al. The CANTOS trial: One important step for clinical cardiology but a giant leap for vascular biology. Arterioscler Thromb Vasc Biol. 2017; 37(11): e174–e177. https://dx.doi.org/10.1161/ATVBAHA.117.310097.

15. Гомбожапова А.Э., Роговская Ю.В., Ребенкова М.С. с соавт. Фенотипическая гетерогенность сердечных макрофагов в постинфарктной регенерации миокарда: перспективы клинических исследований. Сибирский журнал клинической и экспериментальной медицины. 2018; 33(2): 70–76. [Gombozhapova A.E., Rogovskaya Yu.V., Rebenkova M.S. et al. Phenotypic heterogeneity of cardiac macrophages during wound healing following myocardial infarction: perspectives in clinical research. Sibirskiy zhurnal klinicheskoy i eksperimental’noy meditsiny = The Siberian Journal of Clinical and Experimental Medicine. 2018; 33(2): 70–76 (In Russ.)]. https://dx.doi.org/10.29001/2073-8552-2018-33-2-70-76. EDN: XTXQDJ.

16. Evans B., Haskard D., Sempowksi G. et al. Evolution of the macrophage CD163 phenotype and cytokine profiles in a human model of resolving inflammation. Int J Inflamm. 2013; 2013: 780502. https://dx.doi.org/10.1155/2013/780502.

17. Olmes G., Buttner-Herold M., Ferrazzi F. et al. CD163+ M2c-like macrophages predominate in renal biopsies from patients with lupus nephritis. Arthritis Res Ther. 2016; 18: 90. https://dx.doi.org/10.1186/s13075-016-0989-y.

18. Etzerodt A., Moestrup S. CD163 and inflammation: biological, diagnostic, and therapeutic aspects. Antioxidants & Redox Signaling. 2013; 18(17): 2352–63. https://dx.doi.org/10.1089/ars.2012.4834.

19. Li J., Liu C., Gao B. et al. Clinical-pathologic significance of CD163 positive macrophage in IgA nephropathy patients with crescents. Int J Clin Exp Med. 2015; 8(6): 9299–305.

20. Guillen-Gomez E., Guirado L., Belmonte X. et al. Monocyte implication in renal allograft dysfunction. Clin Exp Immunol. 2014; 175(2): 323–33. https://dx.doi.org/10.1111/cei.12228.

21. Guiteras R., Flaquer M., Cruzado J. Macrophage in chronic kidney disease. Clin Kidney J. 2016; 9(6): 765–71.https://dx.doi.org/10.1093/ckj/sfw096

22. Chistiakov D., Killingsworth M., Myasoedova V. et al. CD68/macrosialin: Not just a histochemical marker. Lab Invest. 2017; 97(1): 4–13. https://dx.doi.org/10.1038/labinvest.2016.116.

23. Marks S., Williams S., Tullus K., Sebire N.J. Glomerular expression of monocyte chemoattractant protein-1 is predictive of poor renal prognosis in pediatric lupus nephritis. Nephrol Dial Transplant. 2008; 23(11): 3521–26. https://dx.doi.org/10.1093/ndt/gfn270.

24. Dias C., Malafronte P., Lee J. et al. Role of renal expression of CD68 in the long-term prognosis of proliferative lupus nephritis. J Nephrol. 2017; 30(1): 87–94. https://dx.doi.org/10.1007/s40620-015-0252-7.

25. Kzhyshkowska J. Multifunctional receptor stabilin-1 in homeostasis and disease. Scientific World Journal. 2010; 10: 2039–53.https://dx.doi.org/10.1100/tsw.2010.189.

About the Authors

Maria A. Kercheva, PhD in Medicine, junior researcher at the Central Research Laboratory of Siberian State Medical University of the Ministry of Healthcare of Russia, researcher at the Department of emergency cardiology of the Research Institute of Cardiology, Tomsk National Research Medical Center of the Russian Academy of Sciences. Address: 634050, Tomsk, 2 build. 18 Moskovsky Tract. E-mail: mariiakercheva@mail.ru. ORCID: https://orcid.org/0000-0003-1444-1037
Vyacheslav V. Ryabov, Dr. med. habil., professor, head of the Department of cardiology, Siberian State Medical University of the Ministry of Healthcare of Russia, deputy director for scientific and medical work, acting head of the Department of emergency cardiology, leading researcher at the Laboratory of translational cellular and molecular biomedicine of the Research Institute of Cardiology of Tomsk National Research Medical Center of the Russian Academy of Sciences. Address: 634009. Tomsk, 5 Kooperativny Lane. E-mail: rvvt@cardio-tomsk.ru.
ORCID: https://orcid.org/0000-0002-4358-7329
Alexandra E. Gombozhapova, PhD in Medicine, researcher, cardiologist at the Department of emergency cardiology, Research Institute of Cardiology of Tomsk National Research Medical Center of the Russian Academy of Sciences, assistant at the Department of cardiology of the Advanced Training Faculty and University Staff Faculty of Siberian State Medical University of the Ministry of Healthcare of Russia, junior researcher at the Laboratory of translational cellular and molecular biomedicine National Research Tomsk State University. Address: 634009. Tomsk, 5 Kooperativny Lane. E-mail: gombozhapova@gmail.com. ORCID: https://orcid.org/0000-0003-1281-3714
Ivan V. Stepanov, PhD in Medicine, pathologist, head of еру Department ща pathological anatomy, Research Institute of Cardiology of Tomsk National Research Medical Center of the Russian Academy of Sciences. Address: 634009. Tomsk, 5 Kooperativny Lane. Email: i_v_stepanov@mail.ru. ORCID: https://orcid.org/0000-0002-8543-6027

Similar Articles

By continuing to use our site, you consent to the processing of cookies that ensure the proper functioning of the site.